中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
缩略语 | 第12-14页 |
前言 | 第14-17页 |
研究现状、成果 | 第14-16页 |
研究目的、方法 | 第16-17页 |
一、PVR动物模型的建立 | 第17-29页 |
1.1 对象和方法 | 第17-19页 |
1.1.1 对象 | 第17-18页 |
1.1.2 方法 | 第18-19页 |
1.2 结果 | 第19-24页 |
1.2.1 眼科检查结果 | 第19-20页 |
1.2.2 眼科B超结果 | 第20-21页 |
1.2.3 PVR分级 | 第21-22页 |
1.2.4 组织病理学检查 | 第22-24页 |
1.3 讨论 | 第24-28页 |
1.3.1 PVR的基本病理过程和分期 | 第24-25页 |
1.3.2 常见PVR动物模型的建立方法 | 第25-27页 |
1.3.3 玻璃体腔注射人PRP联合巩膜外冷冻建立兔PVR模型 | 第27-28页 |
1.4 小结 | 第28-29页 |
二、p21~(WAF1/CIP1)在PVR发病中作用机制的研究 | 第29-48页 |
2.1 对象和方法 | 第29-39页 |
2.1.1 对象 | 第29-31页 |
2.1.2 方法 | 第31-39页 |
2.2 结果 | 第39-43页 |
2.2.1 WB方法检测视网膜p21~(WAF1/CIP1)、CDK2、cyclin E蛋白表达 | 第39-40页 |
2.2.2 RT-PCR法检测视网膜p21~(WAF1/CIP1)、CDK_2、cyclin E mRNA的表达 | 第40-43页 |
2.3 讨论 | 第43-47页 |
2.3.1 细胞因子在PVR发病中的作用 | 第43-44页 |
2.3.2 细胞周期及其调控机制 | 第44-45页 |
2.3.3 p21~(WAF1/CIP1)的生物学功能 | 第45-46页 |
2.3.4 p21~(WAF1/CIP1)在PVR发病机制中的作用 | 第46-47页 |
2.4 小结 | 第47-48页 |
三、腺病毒介导外源性p21~(WAF1/CIP1)基因抑制体外培养hRPE细胞增殖及迁移 | 第48-62页 |
3.1 对象和方法 | 第48-51页 |
3.1.1 对象 | 第48-49页 |
3.1.2 方法 | 第49-51页 |
3.2 结果 | 第51-56页 |
3.2.1 p21~(WAF1/CIP1)基因转染人视网膜色素上皮细胞形态及数目的影响 | 第52页 |
3.2.2 MTT法检测细胞增殖 | 第52-53页 |
3.2.3 Transwell检测细胞迁移 | 第53-54页 |
3.2.4 流式细胞仪检测细胞周期 | 第54-55页 |
3.2.5 WB法检测p21~(WAF1/CIP1)、CDK_2、cyclin E蛋白的表达 | 第55-56页 |
3.2.6 RT-PCR方法检测p21~(WAF1/CIP1)、CDK_2、cyclin E mRNA的表达 | 第56页 |
3.3 讨论 | 第56-61页 |
3.3.1 RPE细胞在PVR发病中的作用研究 | 第56-58页 |
3.3.2 p21~(WAF1/CIP1)基因对hRPE细胞增殖及迁移能力的影响 | 第58-59页 |
3.3.3 腺病毒转染p21~(WAF1/CIP1)基因对hRPE细胞周期调控的机制 | 第59-61页 |
3.4 小结 | 第61-62页 |
四、腺病毒介导p21~(WAF1/CIP1)基因抑制兔PVR的实验研究 | 第62-73页 |
4.1 对象和方法 | 第62-65页 |
4.1.1 对象 | 第62-64页 |
4.1.2 方法 | 第64-65页 |
4.2 结果 | 第65-68页 |
4.2.1 临床观察结果及PVR分级 | 第65-66页 |
4.2.2 标本大体观察及病理结果 | 第66-67页 |
4.2.3 WB及RT-PCR检测视网膜p21~(WAF1/CIP1)、CDK_2、cyclin E表达 | 第67-68页 |
4.3 讨论 | 第68-72页 |
4.3.1 腺病毒介导堆因转染技术在眼部疾病中的应用 | 第68-69页 |
4.3.2 增生性玻璃体视网膜病变的治疗现状 | 第69-71页 |
4.3.3 腺病毒介导p21~(WAF1/CIP1)基因对PVR的抑制作用 | 第71-72页 |
4.4 小结 | 第72-73页 |
全文结论 | 第73-75页 |
论文创新点 | 第75-76页 |
参考文献 | 第76-87页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第87-88页 |
综述 | 第88-106页 |
综述参考文献 | 第99-106页 |
致谢 | 第106页 |