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土壤中毒死蜱降解质粒pDOC的转移及其促成的生物强化作用

致谢第7-13页
摘要第13-15页
abstract第15-17页
第一章 文献综述第18-30页
    1.1 农药微生物降解及其降解性质粒第18-21页
        1.1.1 降解农药的微生物种类第18-19页
        1.1.2 微生物降解农药的机理第19-20页
        1.1.3 微生物降解性质粒第20-21页
    1.2 基因水平转移第21-28页
        1.2.1 基因水平转移第22-23页
        1.2.2 基因水平转移的机理第23-24页
        1.2.3 影响基因水平转移的因素第24-26页
        1.2.4 基因水平转移与降解功能形成第26-27页
        1.2.5 基于基因水平转移的污染修复第27-28页
    1.3 本文研究目的和意义第28-30页
第二章 质粒pDOC-gfp的构建第30-41页
    2.1 引言第30页
    2.2 材料和方法第30-35页
        2.2.1 试验菌株第30-31页
        2.2.2 主要试剂及仪器第31-32页
        2.2.3 培养基第32页
        2.2.4 试验菌株的抗药性第32-33页
        2.2.5 质粒pDOC-gfp的构建第33页
        2.2.6 荧光检测第33-34页
        2.2.7 Bacillus latersporus DSP(pDOC-Ggfp)的降解性能第34-35页
            2.2.7.1 Bacillus latersporus DSP(pDOC-gfp)的培养与收集第34页
            2.2.7.2 Bacillus latersporus DSP(pDOC-gfp)对毒死蜱的降解第34-35页
        2.2.8 质粒DNA琼脂糖电泳分析第35页
    2.3 结果与讨论第35-40页
        2.3.1 无机盐培养基中毒死蜱的添加回收率第35页
        2.3.2 试验菌株对抗生素的抗性第35-38页
        2.3.3 Bacillus latersporus DSP(pDOC-gfp)及其荧光检测第38-39页
        2.3.4 Bacillus latersporus DSP(pDOC-gfp)对毒死蜱的降解第39-40页
        2.3.5 Bacillus latersporus DSP(pDOC-gfp)质粒检测第40页
    2.4 小结第40-41页
第三章 质粒pDOC在土壤中的转移及其对毒死蜱降解的强化作用第41-58页
    3.1 引言第41-42页
    3.2 材料和方法第42-47页
        3.2.1 试验菌株第42页
        3.2.2 主要试剂及仪器第42页
        3.2.3 培养基第42-43页
        3.2.4 质粒pDOC对毒死蜱降解的强化作用第43-45页
            3.2.4.1 供试土壤第43页
            3.2.4.2 质粒pDOC-gfp的大量提取第43-45页
            3.2.4.3 质粒pDOC对土壤中毒死蜱降解的强化作用第45页
        3.2.5 质粒转移形成降解菌的分离与鉴定第45-46页
        3.2.6 土壤中毒死蜱的提取及检测第46页
        3.2.7 土壤中毒死蜱降解菌数量第46-47页
        3.2.8 质粒转移的荧光检测第47页
    3.3 结果与讨论第47-57页
        3.3.1 土壤中毒死蜱的添加回收率第47-49页
        3.3.2 质粒pDOC对毒死蜱降解的强化作用第49-57页
            3.3.2.1 质粒pDOC-gfp处理土壤中对毒死蜱的降解第49-50页
            3.3.2.2 质粒pDOC-gfp处理土壤毒死蜱降解菌数量第50页
            3.3.2.3 质粒转移的荧光观察第50-53页
            3.3.2.4 质粒转移形成的新降解菌第53-55页
            附图表第55-57页
    3.4 小结第57-58页
第四章 质粒pDOC强化土壤中毒死蜱降解作用的持久性及其对土壤微生物的影响第58-73页
    4.1 引言第58页
    4.2 材料和方法第58-64页
        4.2.1 试验材料第58-59页
        4.2.2 供试土壤第59页
        4.2.3 质粒pDOC供体菌的制备第59页
        4.2.4 质粒pDOC强化土壤中毒死蜱降解作用的持久性试验第59页
        4.2.5 土壤微生物功能多样性分析第59-60页
        4.2.6 土壤呼吸活性分析第60页
        4.2.7 质粒转移的荧光检测第60页
        4.2.8 数据处理第60-64页
    4.3 结果与讨论第64-71页
        4.3.1 质粒pDOC强化土壤中毒死蜱降解作用的持久性第64-67页
        4.3.2 质粒pDOC强化土壤中微生物功能多样性的变化第67-69页
            4.3.2.1 质粒pDOC强化土壤中微生物群落碳源利用的变化第67-68页
            4.3.2.2 质粒pDOC强化土壤中微生物群落多样性的变化第68-69页
        4.3.3 质粒pDOC强化土壤中土壤呼吸活性的变化第69-71页
    4.4 小结第71-73页
第五章 质粒pDOC在土壤中的迁移及其对毒死蜱降解的强化作用第73-96页
    5.1 引言第73页
    5.2 材料和方法第73-76页
        5.2.1 试验材料第73页
        5.2.2 试验装置第73-75页
        5.2.3 试验方法第75-76页
            5.2.3.1 土壤样品第75页
            5.2.3.2 试验过程第75页
            5.2.3.3 土壤中毒死蜱的提取方法第75-76页
            5.2.3.4 土壤中毒死蜱降解菌的数量第76页
            5.2.3.5 质粒转移的荧光检测第76页
        5.2.4 统计分析第76页
    5.3 结果与讨论第76-95页
        5.3.1 土壤中毒死蜱的添加回收率第76-79页
        5.3.2 饱和土壤中质粒pDOC的迁移及其对毒死蜱降解第79-87页
        5.3.3 非饱和土壤中质粒pDOC的迁移及其对毒死蜱降解第87-89页
        附图表第89-95页
    5.4 小结第95-96页
第六章 质粒pDOC强化毒死蜱降解的影响因子第96-128页
    6.1 引言第96页
    6.2 材料和方法第96-101页
        6.2.1 试验材料第96页
        6.2.2 试验方法第96-101页
            6.2.2.1 土壤样品第96-99页
            6.2.2.2 pDOC供体菌的构建第99页
            6.2.2.3 质粒供体菌与毒死蜱降解第99-100页
            6.2.2.4 浓度对pDOC强化毒死蜱降解的影响第100页
            6.2.2.5 温度对pDOC强化毒死蜱降解的影响第100页
            6.2.2.6 湿度对pDOC强化毒死蜱降解的影响第100页
            6.2.2.7 土壤类型对pDOC强化毒死蜱降解的影响第100页
            6.2.2.8 金华、嘉兴、萧山土壤中毒死蜱的提取及检测第100页
            6.2.2.9 土壤中毒死蜱降解菌的数量第100-101页
            6.2.2.10 质粒转移的荧光检测第101页
    6.3 结果与讨论第101-127页
        6.3.1 金华、嘉兴、萧山土壤中毒死蜱的添加回收率第101页
        6.3.2 gfp标记供体菌的构建第101-106页
            6.3.2.1 土著菌的筛选与鉴定第101-102页
            6.3.2.2 gfp标记供体菌的荧光检测第102-103页
            6.3.2.3 gfp标记供体菌对毒死蜱的降解第103-104页
            6.3.2.4 gfp标记供体菌的质粒检测第104-106页
        6.3.3 不同pDOC供体菌对毒死蜱降解的强化效应第106-109页
        6.3.4 浓度对pDOC强化毒死蜱降解的影响第109-114页
        6.3.5 温度对pDOC强化毒死蜱降解的影响第114-117页
        6.3.6 湿度对pDOC强化毒死蜱降解的影响第117-121页
        6.3.7 土壤类型对pDOC强化毒死蜱降解的影响第121-123页
        附图表第123-127页
    6.4 小结第127-128页
第七章 结论第128-131页
参考文献第131-145页
附录第145-149页

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