| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 引言 | 第10-14页 |
| 第二章 材料和方法 | 第14-23页 |
| 2.1 材料 | 第14-16页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第14页 |
| 2.1.2 主要试剂与药品 | 第14-15页 |
| 2.1.3 主要实验仪器与软件 | 第15-16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-22页 |
| 2.2.1 动物实验的方法及流程 | 第16-17页 |
| 2.2.2 灌注与取材 | 第17-18页 |
| 2.2.3 石蜡切片的制备 | 第18-20页 |
| 2.2.4 荧光定量PCR检测各组大鼠海马CaBP-mRNA的表达 | 第20-21页 |
| 2.2.5 流式细胞仪检测细胞Ca~2+浓度 | 第21-22页 |
| 2.3 统计学分析 | 第22-23页 |
| 第三章 结果 | 第23-36页 |
| 3.1 动物模型的成功率及动物神经功能缺损体征 | 第23-24页 |
| 3.1.1 模型制备结果 | 第23页 |
| 3.1.2 Morris水迷宫-定位航行及空间探索实验 | 第23-24页 |
| 3.2 大鼠病理学变化 | 第24-25页 |
| 3.3 大鼠VCI形成过程中海马CA1区CaBP表达的变化 | 第25-26页 |
| 3.3.1 正常组的表达 | 第25页 |
| 3.3.2 模型组的表达 | 第25页 |
| 3.3.3 药物组的表达 | 第25页 |
| 3.3.4 模型组与药物组的动态比较 | 第25页 |
| 3.3.5 在光学显微镜下观察各组神经纤维成分染色的特点 | 第25-26页 |
| 3.4 荧光定量PCR检测及CaBP-mRNA表达的结果 | 第26-29页 |
| 3.4.1 循环参数的确定 | 第26页 |
| 3.4.2 目的基因CaBP和内参基因的标准曲线及扩增曲线 | 第26-27页 |
| 3.4.3 荧光定量PCR的检测步骤及结果 | 第27-28页 |
| 3.4.4 计算公式及结果分析 | 第28-29页 |
| 3.5 各组大鼠海马细胞内Ca2+表达的动态变化 | 第29-31页 |
| 3.6 附图 | 第31-36页 |
| 第四章 讨论 | 第36-42页 |
| 4.1 Wistar大鼠VCI模型的制作及神经功能评价 | 第36页 |
| 4.2 简易水迷宫的制作与结果评价 | 第36-37页 |
| 4.3 大脑损伤后缺氧缺血的病理生理变化 | 第37-38页 |
| 4.4 神经细胞缺血缺氧后胞内CaBP与Ca~(2+)的动态变化及关系 | 第38-39页 |
| 4.5 丁苯酞上调CaBP表达 | 第39-40页 |
| 4.6 前景与展望 | 第40-42页 |
| 第五章 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 综述 | 第48-58页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 英文缩写词表 | 第58-60页 |
| 在读期间发表的主要学术论文及参与课题 | 第60-62页 |
| 致谢 | 第62-64页 |
