| 英文缩略词表 | 第3-4页 |
| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第10-14页 |
| 材料与方法 | 第14-25页 |
| 1. 细胞系及标本 | 第14页 |
| 1.1 细胞系 | 第14页 |
| 1.2 标本来源 | 第14页 |
| 2. 主要试剂 | 第14-15页 |
| 3. 主要仪器 | 第15-16页 |
| 4. 主要试剂配制方法 | 第16-20页 |
| 4.1 DMEM培养液的配制 | 第16页 |
| 4.2 细胞冻存液的配制 | 第16-17页 |
| 4.3 胎牛血清 | 第17页 |
| 4.4 D-Hanks液的配制 | 第17页 |
| 4.5 0.25%胰酶的配制(含EDTA) | 第17页 |
| 4.6 磷酸盐缓冲液（PBS，0.01M pH值7.2~7.4）的配制 | 第17页 |
| 4.7 0.1%甲基紫溶液配制 | 第17页 |
| 4.8 肝细胞生长因子(HGF)的配制 | 第17页 |
| 4.9 PDTC的配制 | 第17页 |
| 4.10 次强酸的配制 | 第17-18页 |
| 4.11 Ⅳ胶原 | 第18页 |
| 4.12 10×TAE电泳缓冲液 | 第18页 |
| 4.13 1%-2%琼脂糖凝胶 | 第18页 |
| 4.14 Western blot主要试剂的配制 | 第18-20页 |
| 4.15 0.5mol/L EDTA的配制 | 第20页 |
| 4.16 0.1% DEPC处理水 | 第20页 |
| 5. 方法 | 第20-24页 |
| 5.1 细胞培养及细胞分散 | 第20页 |
| 5.2 Transwell小室实验 | 第20-21页 |
| 5.3 免疫印迹分析 | 第21-22页 |
| 5.4 RT-PCR检测基因的表达 | 第22-23页 |
| 5.5 免疫组化 | 第23-24页 |
| 6. 统计学分析 | 第24-25页 |
| 结果 | 第25-32页 |
| 1. HGF诱导HepG2和MDA-MB-231细胞发生EMT | 第25页 |
| 1.1 光学显微镜观察HepG2和MDA-MB-231细胞形态的改变 | 第25页 |
| 1.2 RT-PCR和免疫印迹法检测EMT相关因子 | 第25页 |
| 2. HGF通过NF-κB诱导HepG2和MDA-MB-231细胞发生EMT | 第25-26页 |
| 2.1 HGF通过NF-κB介导细胞形态的改变 | 第25页 |
| 2.2 RT-PCR和免疫印迹法检测E-cadherin、Vimentin和NF-κB的表达 | 第25-26页 |
| 3. HGF促进HepG2和MDA-MB-231细胞侵袭和迁移依赖于NF-κB的活化 | 第26页 |
| 3.1 HGF对HepG2和MDA-MB-231细胞侵袭和迁移能力的影响 | 第26页 |
| 3.2 HGF通过NF-κB介导细胞侵袭和迁移能力的改变 | 第26页 |
| 4. E-cadherin、Vimentin和NF-κB的表达及其与各临床病理因素之间的关系 | 第26-32页 |
| 4.1 E-cadherin、Vimentin和NF-κB在肝癌中的表达及相关性分析 | 第26-27页 |
| 4.2 E-cadherin、Vimentin和NF-κB在乳腺癌中的表达及相关性分析 | 第27-32页 |
| 讨论 | 第32-35页 |
| 结论 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-41页 |
| 附图 | 第41-47页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48页 |
