| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-23页 |
| 1.1 超滤膜和纳滤膜概况 | 第12页 |
| 1.2 超滤膜和纳滤膜的制备方法 | 第12-14页 |
| 1.2.1 L-S相转化法 | 第12-13页 |
| 1.2.2 孔径转化法 | 第13页 |
| 1.2.3 共混法 | 第13页 |
| 1.2.4 荷电化法 | 第13页 |
| 1.2.5 复合法 | 第13-14页 |
| 1.3 膜污染问题 | 第14-16页 |
| 1.3.1 污染物的成分 | 第14-15页 |
| 1.3.2 膜污染机理 | 第15-16页 |
| 1.4 膜污染控制方法 | 第16-17页 |
| 1.4.1 提高膜的抗吸附能力 | 第16-17页 |
| 1.4.2 提高膜的抗菌能力 | 第17页 |
| 1.5 PES膜、SPEEK膜及其特性 | 第17-19页 |
| 1.5.1 PES、PEEK的改性方法 | 第18页 |
| 1.5.2 PES、PEEK的磺化 | 第18-19页 |
| 1.5.3 PES、SPEEK的共混 | 第19页 |
| 1.6 壳寡糖概述 | 第19-20页 |
| 1.7 研究意义及研究内容 | 第20-23页 |
| 1.7.1 研究背景及意义 | 第20页 |
| 1.7.2 研究内容 | 第20-23页 |
| 第二章 负载纳米银SPES聚酰胺纳滤膜的制备及其性能研究 | 第23-42页 |
| 2.1 实验材料和设备 | 第23-25页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.1.2 实验设备 | 第24-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-28页 |
| 2.2.1 磺化聚醚砜的制备 | 第25页 |
| 2.2.2 负载纳米银SPES聚酰胺纳滤膜的制备 | 第25-26页 |
| 2.2.3 PES、SPES的测试 | 第26-27页 |
| 2.2.4 SPES-Ag/PA纳滤膜表征及性能测试 | 第27-28页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第28-40页 |
| 2.3.1 PES、SPES的表征 | 第28-30页 |
| 2.3.2 磺化时间对磺化度的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.3 磺化度对SPES超滤膜性能的影响 | 第31-33页 |
| 2.3.4 SPES-Ag/PA纳滤膜的表征 | 第33-37页 |
| 2.3.5 SPES-Ag/PA纳滤膜的通量和截留率分析 | 第37页 |
| 2.3.6 SPES-Ag/PA纳滤膜的抗菌性分析 | 第37-39页 |
| 2.3.7 SPES-Ag/PA纳滤膜纳米银的释放效果分析 | 第39-40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-42页 |
| 第三章 负载纳米银PES/SPES/SPEEK聚酰胺纳滤膜的制备及其性能研究 | 第42-63页 |
| 3.1 实验材料和设备 | 第42-44页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第42-43页 |
| 3.1.2 实验设备 | 第43-44页 |
| 3.2 实验方法 | 第44-47页 |
| 3.2.1 磺化聚醚醚酮的制备 | 第44页 |
| 3.2.2 PES/SPES超滤膜的制备 | 第44-45页 |
| 3.2.3 PES/SPES/SPEEK超滤膜的制备 | 第45页 |
| 3.2.4 负载纳米银PES/SPES/SPEEK聚酰胺纳滤膜的制备 | 第45页 |
| 3.2.5 PES/SPES超滤膜的测试 | 第45-46页 |
| 3.2.6 PES/SPES/SPEEK超滤膜的测试 | 第46-47页 |
| 3.2.7 PES/SPES/SPEEK-Ag/PA纳滤膜的测试 | 第47页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第47-61页 |
| 3.3.1 PES/SPES比例对膜性能的影响 | 第47-51页 |
| 3.3.2 SPEEK质量分数对膜性能的影响 | 第51-53页 |
| 3.3.3 PES/SPES/SPEEK-Ag/PA纳滤膜的表征 | 第53-57页 |
| 3.3.4 PES/SPES/SPEEK-Ag/PA纳滤膜通量和截留率分析 | 第57页 |
| 3.3.5 PES/SPES/SPEEK-Ag/PA纳滤膜抗菌性分析 | 第57-60页 |
| 3.3.6 PES/SPES/SPEEK-Ag/PA纳滤膜纳米银的释放效果分析 | 第60-61页 |
| 3.4 结论 | 第61-63页 |
| 第四章 负载纳米银PES/SPES/SPEEK聚酰胺纳滤膜在分离壳聚糖酶解液中的应用 | 第63-75页 |
| 4.1 实验材料和设备 | 第63-64页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第63-64页 |
| 4.1.2 实验设备 | 第64页 |
| 4.2 实验方法 | 第64-66页 |
| 4.2.1 壳聚糖酶解液的制备 | 第64-65页 |
| 4.2.2 壳寡糖溶液的膜分离 | 第65页 |
| 4.2.3 壳寡糖的测试及表征 | 第65-66页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第66-73页 |
| 4.3.1 酶解条件对溶液粘度的影响 | 第66-68页 |
| 4.3.2 膜分离条件对膜通量的影响 | 第68-70页 |
| 4.3.3 纳滤膜抗污染能力分析 | 第70页 |
| 4.3.4 壳寡糖的红外分析 | 第70-71页 |
| 4.3.5 壳寡糖的质谱分析 | 第71页 |
| 4.3.6 壳寡糖的液相分析 | 第71-73页 |
| 4.3.7 壳寡糖的GPC分析 | 第73页 |
| 4.4 本章小结 | 第73-75页 |
| 结论与展望 | 第75-77页 |
| 一、结论 | 第75页 |
| 二、创新点 | 第75-76页 |
| 三、展望 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-87页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第87-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 附件 | 第89页 |
