| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一部分 引言 | 第10-23页 |
| 一、水通道蛋白的发现、命名与分类 | 第10-11页 |
| 二、水通道蛋白的结构和水转运功能 | 第11-13页 |
| 三、水通道蛋白的表达和生理功能 | 第13-14页 |
| 四、AQP的发现、表达及生理功能 | 第14-17页 |
| 五、视神经脊髓炎 | 第17页 |
| 六、视神经脊髓炎与AQP-4 | 第17-19页 |
| (一) AQP4蛋白是NMO-IgG的特异性靶抗原 | 第17-18页 |
| (二) AQP4蛋白表达改变与NMO的关系 | 第18页 |
| (三) 抗-AQP4抗体在NMO炎症病理过程中的作用机制 | 第18页 |
| (四) 抗AQP4抗体检测在NMO诊断和鉴别诊断中的意义 | 第18-19页 |
| 七、残疾状况评分量表(EDSS) | 第19-21页 |
| (一) EDSS量表的主要步骤 | 第20页 |
| (二) 完整的EDSS评分 | 第20-21页 |
| 八、阻断NMO-IgG与AQP4结合的天然小分子阻断剂的筛选 | 第21页 |
| 九、本研究的目的和意义 | 第21-23页 |
| 第二部分 材料与方法 | 第23-35页 |
| 一、实验材料 | 第23-24页 |
| (一) 细胞株及培养基 | 第23页 |
| (二) 质粒,载体及脂质体 | 第23页 |
| (三) 主要生化与分子生物学试剂 | 第23页 |
| (四) 主要实验仪器、耗材 | 第23-24页 |
| 二、实验方法 | 第24-35页 |
| (一) 细胞模型的建立 | 第24-28页 |
| (二) 稳定转染和有限稀释 | 第28-29页 |
| (三) 细胞模型的鉴定 | 第29-32页 |
| (四) 患者血清样本采集 | 第32页 |
| (五) 细胞免疫荧光检测患者血清中抗AQP4的抗体 | 第32-33页 |
| (六) 阻断NMO-IgG与AQP4结合的天然小分子阻断剂的筛选 | 第33-35页 |
| 第三部分 实验结果 | 第35-45页 |
| 一、细胞模型的建立 | 第35-36页 |
| 二、稳定转染和有限稀释 | 第36-37页 |
| 三、细胞模型的鉴定 | 第37-38页 |
| 四、利用细胞免疫荧光方法,在患者血清中成功检测出抗AQP4的抗体 | 第38-39页 |
| 五、细胞免疫荧光方法检测患者血清中AQP4抗体具有高度敏感性和特异性 | 第39-40页 |
| 六、视神经脊髓炎患者血清中抗AQP-4抗体滴度与残疾状况评分呈正相关 | 第40-41页 |
| 七、阻断NMO-IgG与AQP4结合的天然小分子阻断剂的筛选 | 第41-45页 |
| 第四部分 讨论 | 第45-48页 |
| 一.抗AQP-4抗体在NMO诊断和鉴别诊断的意义 | 第45-46页 |
| 二、本研究建立的筛选模型适合NMO-IgG与AQP4结合的天然小分子阻断剂的筛选 | 第46-47页 |
| 三.NMO-IgG与AQP4结合的天然小分子阻断剂为治疗NMO提供了新的治疗策略 | 第47-48页 |
| 第五部分 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 作者简历 | 第58-59页 |
| 在学期间公开发表论文及著作情况 | 第59页 |
