| 摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 缩略词表 | 第15-16页 |
| 第一章 序言 | 第16-19页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第19-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-22页 |
| 2.1.1 实验动物与分组 | 第19页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.3 主要仪器与设备 | 第20-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-36页 |
| 2.2.1 大鼠原代皮层神经元培养 | 第22-23页 |
| 2.2.2 免疫荧光检测大鼠原代皮层神经元NeuN和 βIII-tubulin的表达 | 第23-24页 |
| 2.2.3 大鼠原代皮层神经元OGD模型构建 | 第24-25页 |
| 2.2.4 LDH释放率检测 | 第25页 |
| 2.2.5 细胞活力检测 | 第25页 |
| 2.2.6 大鼠栓线MCAO模型构建 | 第25-27页 |
| 2.2.7 大鼠脑梗体积测量 | 第27-28页 |
| 2.2.8 大鼠侧脑室注射 | 第28页 |
| 2.2.9 TDAG8-siRNA设计与合成 | 第28-30页 |
| 2.2.10 BTB09089细胞毒性实验 | 第30页 |
| 2.2.11 实时荧光定量PCR检测相关蛋白表达 | 第30-32页 |
| 2.2.12 Western blot检测相关蛋白表达 | 第32-36页 |
| 2.3 统计分析 | 第36-37页 |
| 第三章 实验结果 | 第37-61页 |
| 3.1 Western blot检测原代皮层神经元标记蛋白NeuN和 βIII-tubulin的表达 | 第37-38页 |
| 3.2 免疫荧光检测大鼠原代皮层神经元NeuN和 βIII-tubulin的表达 | 第38页 |
| 3.3 MCAO模型评估 | 第38-40页 |
| 3.4 OGD模型评估 | 第40-41页 |
| 3.5 TDAG8在大鼠脑缺血再灌注损伤表达变化 | 第41-43页 |
| 3.6 BTB09089细胞毒性检测（CCK-8 法） | 第43页 |
| 3.7 BTB09089有效性检测 | 第43-44页 |
| 3.8 TDAG8-siRNA有效性检测 | 第44-45页 |
| 3.9 活化TDAG8通过Akt信号通路抑制大鼠脑缺血再灌注诱导的神经元凋亡和缺血后炎症反应 | 第45-61页 |
| 3.9.1 BTB09089预处理降低大鼠缺血再灌注损伤 | 第46-52页 |
| 3.9.2 SiRNA预处理加重脑缺血再灌注损伤 | 第52-57页 |
| 3.9.3 Akt信号通路参与TDAG8降低脑缺血再灌注损伤 | 第57-61页 |
| 第四章 讨论 | 第61-68页 |
| 4.1 大鼠原代皮层神经元培养与鉴定 | 第61页 |
| 4.2 大鼠离体/在体脑缺血再灌注损伤模型构建 | 第61-63页 |
| 4.3 TDAG8在大鼠脑缺血再灌注损伤后表达变化 | 第63-64页 |
| 4.4 BTB09089激活大鼠大脑皮层TDAG8的表达 | 第64页 |
| 4.5 SiRNA抑制大鼠脑TDAG8的表达 | 第64-65页 |
| 4.6 活化TDAG8通过Akt信号通路抑制大鼠脑缺血再灌注诱导的神经元凋亡和缺血后炎症反应 | 第65-68页 |
| 第五章 结论与展望 | 第68-69页 |
| 5.1 结论 | 第68页 |
| 5.2 展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第74页 |
