中文摘要 | 第3-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
引言 | 第13-15页 |
1 实验材料 | 第15-17页 |
1.1 标本采集 | 第15页 |
1.2 实验试剂及耗材 | 第15-16页 |
1.3 实验仪器 | 第16-17页 |
2 实验方法 | 第17-33页 |
2.1 EMs体外细胞模型的建立 | 第17-20页 |
2.1.1 分离培养 | 第17-18页 |
2.1.2 细胞传代 | 第18-19页 |
2.1.3 细胞计数 | 第19页 |
2.1.4 细胞鉴定 | 第19-20页 |
2.2 药物血清的制备 | 第20-21页 |
2.2.1 药物准备 | 第20页 |
2.2.2 药物血清制备 | 第20-21页 |
2.2.3 药物血清采集 | 第21页 |
2.3 检测指标 | 第21-33页 |
2.3.1 倒置显微镜下观察细胞形态 | 第21-22页 |
2.3.2 透射电子显微镜下观察细胞超微结构 | 第22-23页 |
2.3.3 CCK-8 法检测细胞的增殖抑制率 | 第23-24页 |
2.3.4 流式细胞仪检测细胞周期 | 第24-25页 |
2.3.5 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第25页 |
2.3.6 Western Blot法检测细胞核中TLR4、NF-κB、IL-1 的蛋白表达 | 第25-29页 |
2.3.7 凝胶电泳迁移率实验(EMSA)法检测细胞核中NF-κB蛋白的结合能力 | 第29-33页 |
3 统计方法 | 第33页 |
4 结果 | 第33-46页 |
4.1 ESC免疫细胞化学鉴定 | 第33-34页 |
4.2 ESC细胞形态及超微结构的变化 | 第34-36页 |
4.2.1 倒置显微镜下观察细胞形态 | 第34页 |
4.2.2 倒置显微镜下观察药物血清作用后的细胞形态: | 第34-35页 |
4.2.3 透射电镜下观察药血清作用后细胞的超微结构 | 第35-36页 |
4.3 CCK-8 法检测药物血清对细胞增殖抑制率的影响 | 第36-38页 |
4.4 流式细胞仪检测药物血清对细胞周期及凋亡的影响 | 第38-40页 |
4.4.1 药物血清对细胞周期的影响 | 第38-39页 |
4.4.2 药物血清对细胞凋亡率的影响 | 第39-40页 |
4.5 Western Blot检测药物血清对细胞核中IL-1、NF-κB、TLR4蛋白表达的影响 | 第40-42页 |
4.6 PDTC联合中药药物血清对细胞核中IL-1、NF-κB、TLR4蛋白表达的影响 | 第42-45页 |
4.7 EMSA检测药物血清对细胞核中NF-κB蛋白结合能力的影响 | 第45-46页 |
5 讨论 | 第46-70页 |
5.1 西医对EMs的认识 | 第46-49页 |
5.1.1 EMs的发病机理 | 第46-48页 |
5.1.2 EMs的西医治疗 | 第48-49页 |
5.2 EMs与TLR4/NF-κB信号通路 | 第49-56页 |
5.2.1 TLR4/NF-κB信号通路的概述 | 第49-51页 |
5.2.2 TLR4/NF-κB信号通路与EMs的关系 | 第51-56页 |
5.3 蠲痛饮治疗子宫内膜异位症的理论研究 | 第56-62页 |
5.3.1 对子宫内膜异位症病因病机的认识 | 第56-58页 |
5.3.2 蠲痛饮方的组方特点及现代药理学分析 | 第58-61页 |
5.3.3 蠲痛饮方治疗EMs的现代实验研究 | 第61-62页 |
5.4 实验结果分析 | 第62-70页 |
5.4.1 对照药物的选择依据 | 第63-64页 |
5.4.2 药物血清作用后细胞超微结构的变化情况 | 第64-65页 |
5.4.3 药物血清对细胞增殖抑制率的影响 | 第65页 |
5.4.4 药物血清对细胞周期及凋亡的影响 | 第65-67页 |
5.4.5 药物血清对细胞核中TLR4、NF-κB、IL-1 蛋白表达的分析 | 第67-68页 |
5.4.6 PDTC联合药物血清对细胞核中TLR4、NF-κB、IL-1 蛋白表达的分析 | 第68-69页 |
5.4.7 PDTC及药物血清对细胞核中NF-κB蛋白结合能力的分析 | 第69-70页 |
6 问题与展望 | 第70-72页 |
6.1 存在的问题 | 第70页 |
6.2 展望 | 第70-72页 |
结论 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-82页 |
附图 | 第82-102页 |
缩略词表 | 第102-103页 |
综述 相关细胞因子与子宫内膜异位症 | 第103-112页 |
参考文献 | 第108-112页 |
致谢 | 第112-113页 |
个人简历及攻读学位期间获得的科研成果 | 第113页 |