| 英文缩略词表 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-15页 |
| ABSTRACT | 第15-28页 |
| 前言 | 第32-34页 |
| 第一部分 理论研究 | 第34-45页 |
| 1 中医学对中风的认识 | 第34-35页 |
| 2 补阳还五汤组方原理探讨 | 第35-36页 |
| 3 缺血性中风发病机制与补阳还五汤作用机理 | 第36-38页 |
| 4 自噬 | 第38-40页 |
| 4.1 自噬概述 | 第38页 |
| 4.2 自噬的过程及检测 | 第38-39页 |
| 4.3 自噬的调控 | 第39-40页 |
| 5 脑缺血状态下半暗带自噬的作用与调控 | 第40-42页 |
| 5.1 半暗带自噬与脑缺血损伤 | 第40-42页 |
| 5.2 脑缺血状态下自噬的调控机制 | 第42页 |
| 6 Cav1与脑缺血损伤 | 第42-43页 |
| 7 Cav1在自噬调控中的作用及机制 | 第43-45页 |
| 第二部分 实验研究 | 第45-107页 |
| 第一章 基因敲除小鼠鉴定繁殖方法与Cav1在脑内表达定位 | 第45-54页 |
| 引言 | 第45页 |
| 材料与方法 | 第45-51页 |
| 1 材料 | 第45-48页 |
| 1.1 实验动物 | 第45-46页 |
| 1.2 主要仪器 | 第46-47页 |
| 1.3 主要试剂 | 第47页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第47-48页 |
| 2 方法 | 第48-51页 |
| 2.1 基因型鉴定 | 第48-49页 |
| 2.2 繁殖方法 | 第49-50页 |
| 2.3 脑组织取材与处理 | 第50页 |
| 2.4 组织切片的制备 | 第50页 |
| 2.5 IHC染色 | 第50-51页 |
| 2.6 统计学分析 | 第51页 |
| 结果 | 第51-53页 |
| 1 部分Cav1基因敲除小鼠基因型鉴定结果 | 第51-52页 |
| 2 Cav1基因敲除小鼠的最优繁殖方式 | 第52页 |
| 3 Cav1在小鼠脑内的表达与定位 | 第52-53页 |
| 讨论 | 第53-54页 |
| 结论 | 第54页 |
| 第二章 自噬在脑缺血后半暗带组织中激活情况及作用 | 第54-74页 |
| 引言 | 第54-55页 |
| 材料与方法 | 第55-66页 |
| 1 材料 | 第55-60页 |
| 1.1 实验动物 | 第55页 |
| 1.2 主要仪器 | 第55-57页 |
| 1.3 主要药物及试剂 | 第57-58页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第58-60页 |
| 2 方法 | 第60-66页 |
| 2.1 实验设计 | 第60页 |
| 2.2 模型制备与评价 | 第60-61页 |
| 2.3 神经功能评分 | 第61-62页 |
| 2.4 脑梗死体积测定 | 第62页 |
| 2.5 半暗带皮层组织取材与处理 | 第62-63页 |
| 2.6 组织切片的制备 | 第63页 |
| 2.7 病理形态学观察 | 第63-64页 |
| 2.8 AP的TEM检测 | 第64页 |
| 2.9 WB检测 | 第64-66页 |
| 2.10 统计学分析 | 第66页 |
| 结果 | 第66-73页 |
| 讨论 | 第73-74页 |
| 结论 | 第74页 |
| 第三章 Cav1通过mTOR/ULK1通路调控脑缺血后半暗带自噬 | 第74-91页 |
| 引言 | 第74-75页 |
| 材料与方法 | 第75-83页 |
| 1 材料 | 第75-79页 |
| 1.1 实验动物 | 第75页 |
| 1.2 主要仪器 | 第75-77页 |
| 1.3 主要试剂 | 第77-79页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第79页 |
| 2 方法 | 第79-83页 |
| 2.1 实验设计 | 第79页 |
| 2.2 半暗带皮层组织取材与处理 | 第79页 |
| 2.3 组织切片的制备 | 第79页 |
| 2.4 AP的TEM检测 | 第79页 |
| 2.5 IHC染色 | 第79-80页 |
| 2.6 WB检测 | 第80页 |
| 2.7 RT-qPCR检测 | 第80-83页 |
| 2.8 统计学分析 | 第83页 |
| 结果 | 第83-90页 |
| 讨论 | 第90-91页 |
| 结论 | 第91页 |
| 第四章 补阳还五汤调控Cav1/mTOR/ULK1通路介导的自噬抗脑缺血损伤机制 | 第91-107页 |
| 引言 | 第91-92页 |
| 材料与方法 | 第92-95页 |
| 1 材料 | 第92-93页 |
| 1.1 实验动物 | 第92页 |
| 1.2 主要仪器 | 第92-93页 |
| 1.3 主要试剂 | 第93页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第93页 |
| 2 方法 | 第93-95页 |
| 2.1 实验设计 | 第93-94页 |
| 2.2 模型制备与评价 | 第94页 |
| 2.3 神经功能评分 | 第94页 |
| 2.4 脑梗死体积测定 | 第94页 |
| 2.5 半暗带皮层组织取材与处理 | 第94页 |
| 2.6 组织切片的制备 | 第94页 |
| 2.7 病理形态学观察 | 第94页 |
| 2.8 AP的TEM检测 | 第94页 |
| 2.9 WB检测 | 第94-95页 |
| 2.10 RT-q PCR检测 | 第95页 |
| 2.11 统计学分析 | 第95页 |
| 结果 | 第95-103页 |
| 讨论 | 第103-106页 |
| 结论 | 第106-107页 |
| 第三部分 结语 | 第107-109页 |
| 参考文献 | 第109-118页 |
| 综述 缺血性中风脑保护药物治疗的潜在新靶点:调控半暗带自噬 | 第118-128页 |
| 参考文献 | 第124-128页 |
| 致谢 | 第128-130页 |
| 附录 | 第130-134页 |
