| 致谢 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 缩略词表 | 第14-18页 |
| 1 引言 | 第18-37页 |
| 1.1 植物病害与园艺生产 | 第18-25页 |
| 1.1.1 园艺作物的主要病害 | 第20-22页 |
| 1.1.2 环境与植物病害 | 第22-25页 |
| 1.2 植物抗病机制及调控 | 第25-34页 |
| 1.2.1 植物的抗病信号途径 | 第26-30页 |
| 1.2.2 植物的主要病害调控手段 | 第30-32页 |
| 1.2.3 DHL及其作用研究 | 第32-34页 |
| 1.4 本文研究的目的意义 | 第34-37页 |
| 2 DHL缓解番茄中真菌病害Botrytis cinerea的效应 | 第37-48页 |
| 摘要 | 第37-38页 |
| 2.1 试验材料与方法 | 第38-43页 |
| 2.1.1 材料及培养 | 第38-39页 |
| 2.1.2 DHL配制方法及使用浓度 | 第39页 |
| 2.1.3 实验设计 | 第39-40页 |
| 2.1.4 Botrytis cinerea的培养 | 第40页 |
| 2.1.5 Botrytis cinerea孢子的获取及接种处理 | 第40页 |
| 2.1.6 Botrytis cinerea病斑面积测定 | 第40-41页 |
| 2.1.7 总RNA的提取、纯化和cDNA的合成 | 第41页 |
| 2.1.8 Real-time PCR分析基因的相对表达量 | 第41-42页 |
| 2.1.9 Botrytis cinerea生长量测定 | 第42-43页 |
| 2.2 结果与分析 | 第43-46页 |
| 2.2.1 DHL处理的番茄Botrytis cinerea接种后与对照水处理后的表观差异 | 第43-44页 |
| 2.2.2 DHL处理的与对照水处理后的番茄Botrytis cinerea接种后病斑面积以及灰霉生长量的差异 | 第44-45页 |
| 2.2.3 番茄抗病相关的基因表达 | 第45-46页 |
| 2.3 讨论 | 第46-48页 |
| 3 DHL提高番茄对真菌病害Botrytis cinerea的抗性且该效应的发生依赖JA信号路径 | 第48-61页 |
| 摘要 | 第48-49页 |
| 3.1 试验方法 | 第49-51页 |
| 3.1.1 JA、SA溶液配制 | 第49-50页 |
| 3.1.2 载体构建 | 第50-51页 |
| 3.1.3 培养方法 | 第51页 |
| 3.2 结果与分析 | 第51-58页 |
| 3.2.1 SA、JA外源处理TRV：00以及番茄NPR1和PI基因沉默后接种Botrytiscinerea后表型观察 | 第51-52页 |
| 3.2.2 SA、JA外源处理TRV：00以及番茄NPR1和PI基因沉默后接种Botrytiscinerea后的病斑面积及病原菌含量的统计 | 第52-53页 |
| 3.2.3 SA、JA外源处理TRV：00以及番茄NPR1和PI基因沉默后接种Botrytiscinerea所引起的抗性相关基因的表达 | 第53-54页 |
| 3.2.4 DHL外源处理的番茄在接种Botrytis cinerea后的表型观察 | 第54-56页 |
| 3.2.5 DHL外源处理NPR1和PI基因沉默后的番茄植株在接种Botrytis cinerea后的病斑面积及病原菌含量的变化 | 第56-57页 |
| 3.2.6 DHL外源处理TRV：00、NPR1和PI基因沉默后的番茄在接种Botrytis cinerea后的抗性相关基因的表达 | 第57-58页 |
| 3.3 讨论 | 第58-61页 |
| 4 DHL缓解拟南芥中Botrytis cinerea病害的效应及机制 | 第61-68页 |
| 摘要 | 第61-62页 |
| 4.1 材料及方法 | 第62页 |
| 4.1.1 材料及培养 | 第62页 |
| 4.1.2 实验设计 | 第62页 |
| 4.2 试验方法 | 第62-64页 |
| 4.2.1 DAB及NBT染色方法 | 第62-64页 |
| 4.3 结果与分析 | 第64-67页 |
| 4.3.1 DHL外源处理的拟南芥在接种Botrytis cinerea后的表型观察 | 第64-65页 |
| 4.3.2 DHL外源处理的拟南芥在接种Botrytis cinerea后的H_2O_2、O~(2-)的变化 | 第65-66页 |
| 4.3.3 DHL外源处理的拟南芥在接种Botrytis cinerea后的抗性相关基因的表达 | 第66-67页 |
| 4.4 讨论 | 第67-68页 |
| 5 CO_2加富助长番茄中真菌性病原菌Botrytis cinerea的生长及DHL调控 | 第68-82页 |
| 摘要 | 第68-69页 |
| 5.1 材料与方法 | 第69-71页 |
| 5.1.1 材料 | 第69页 |
| 5.1.2 实验设计 | 第69-70页 |
| 5.1.3 台盼蓝染色方法 | 第70页 |
| 5.1.4 叶绿素荧光成像分析 | 第70页 |
| 5.1.5 脂氧合酶(LOXs)活性测定 | 第70-71页 |
| 5.1.6 蛋白酶抑制因子(PIs)活性测定 | 第71页 |
| 5.2 结果与分析 | 第71-80页 |
| 5.2.1 CO_2加富下番茄离体接种灰霉病原菌后的表型及病斑面积差异观察 | 第71-73页 |
| 5.2.2 CO_2加富下番茄活体接种灰霉病原菌后的表型及病原菌含量分析 | 第73-74页 |
| 5.2.3 接种灰霉病原菌后的细胞坏死及H_2O_2和O~(2-)的变化 | 第74-75页 |
| 5.2.4 茉莉酸信号路径相关基因的表达 | 第75-76页 |
| 5.2.5 水杨酸下游响应基因的表达 | 第76-77页 |
| 5.2.6 番茄抗病相关酶活的变化 | 第77-78页 |
| 5.2.7 CO_2加富下DHL对番茄灰霉病抗性影响 | 第78-79页 |
| 5.2.8 CO_2加富下DHL处理后番茄抗性相关基因的表达 | 第79-80页 |
| 5.3 讨论 | 第80-82页 |
| 6 结论 | 第82-84页 |
| 参考文献 | 第84-91页 |
| 个人简历 | 第91-92页 |
| 发表论文 | 第92页 |
