| 中文摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 主要中英文缩写 | 第12-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-18页 |
| 第二章 实验材料 | 第18-22页 |
| 2.1 实验主要仪器 | 第18页 |
| 2.2 实验细胞 | 第18页 |
| 2.3.实验试剂及溶液配制 | 第18-22页 |
| 2.3.1 主要实验试剂配置 | 第18-19页 |
| 2.3.2 主要实验溶液配制 | 第19-22页 |
| 第三章 实验方法 | 第22-30页 |
| 3.1 人单核细胞（THP-1 细胞）培养 | 第22-23页 |
| 3.1.1 THP-1 细胞培养 | 第22页 |
| 3.1.2 细胞计数 | 第22页 |
| 3.1.3 细胞传代 | 第22页 |
| 3.1.4 细胞冻存 | 第22-23页 |
| 3.1.5 细胞复苏 | 第23页 |
| 3.2 巨噬细胞微粒制备和分离 | 第23-24页 |
| 3.2.1 香烟烟雾CSE原液制备 | 第23页 |
| 3.2.2 佛波酯活化处理 | 第23页 |
| 3.2.3 香烟烟雾提取物处理 THP-1 细胞 | 第23-24页 |
| 3.2.4 巨噬细胞微粒收集 | 第24页 |
| 3.3 探讨巨噬细胞微粒对THP-1 细胞的影响 | 第24-28页 |
| 3.3.1 巨噬细胞微粒作用组 | 第24-28页 |
| 3.3.2 MAPK特异性抑制剂作用组 | 第28页 |
| 3.4 统计学分析 | 第28-30页 |
| 第四章 实验结果 | 第30-39页 |
| 4.1 100nM佛波酯诱导THP-1 细胞活化贴壁观察 | 第30页 |
| 4.2 CSE处理活化的THP-1 细胞后细胞形态的变化 | 第30-31页 |
| 4.3 酶联免疫分析（ELISA）检测巨噬细胞微粒诱导THP-1 细胞产生IL-8 的情况 | 第31-33页 |
| 4.4 western blotting检测巨噬细胞微粒处理THP-1 细胞后对MAPK活化的影响 | 第33-36页 |
| 4.5 酶联免疫分析（ELISA）检测抑制剂处理后，巨噬细胞微粒诱导THP-1 细胞产生IL-8 的情况 | 第36-39页 |
| 第五章 讨论 | 第39-43页 |
| 第六章 结论 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 研究生期间发表的论文 | 第49-51页 |
| 致谢 | 第51页 |
