| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章前言 | 第10-12页 |
| 第2章材料与方法 | 第12-16页 |
| 2.1 主要设备和耗材 | 第12-13页 |
| 2.2 主要耗材与试剂 | 第13-14页 |
| 2.3 小鼠干眼模型制作 | 第14-16页 |
| 第3章实验过程 | 第16-24页 |
| 3.1 小鼠干眼模型临床指标评估 | 第16-22页 |
| 3.1.1 泪膜破裂时间（Tear film break-up time, TBUT） | 第16页 |
| 3.1.2 角膜荧光素染色 | 第16-17页 |
| 3.1.3 炎症指数 | 第17页 |
| 3.1.4 泪液分泌量检测 | 第17页 |
| 3.1.5 冰冻切片 | 第17页 |
| 3.1.6 苏木素-伊红染色（HE染色） | 第17-18页 |
| 3.1.7 石蜡切片&过碘酸-希夫染色（periodic acid-schiff，PAS染色） | 第18-19页 |
| 3.1.8 组织原位凋亡检测 | 第19页 |
| 3.1.9 间接免疫荧光染色法 | 第19-20页 |
| 3.1.10 免疫组织化学染色法 | 第20-21页 |
| 3.1.11 Western Blot蛋白检测 | 第21-22页 |
| 3.2 统计分析 | 第22-24页 |
| 第4章结果 | 第24-30页 |
| 4.1 0.2%BAC+人工干燥环境诱导小鼠干眼模型结果 | 第24页 |
| 4.2 DCBE能提高泪膜稳定性，修复上皮缺损 | 第24-26页 |
| 4.3 DCBE能减轻角膜鳞状上皮化生 | 第26-27页 |
| 4.4 DCBE能减少角膜上皮细胞凋亡 | 第27页 |
| 4.5 DCBE能加快角膜上皮修复速度 | 第27-28页 |
| 4.6 DCBE增加杯状细胞数量 | 第28-30页 |
| 第5章讨论 | 第30-34页 |
| 第6章结论 | 第34-36页 |
| 参考文献 | 第36-40页 |
| 综述 | 第40-46页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| 附录 | 第46-48页 |
| 作者攻读学位期间的科研成果 | 第48-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
