中文摘要 | 第8-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-35页 |
1 我国农药工业 | 第11-12页 |
2 除草剂在土壤中的行为 | 第12-13页 |
3 农药对土壤中微生物的影响 | 第13-17页 |
3.1 农药对土壤微生物群落和数量的影响 | 第14-15页 |
3.2 农药对对土壤呼吸作用的影响 | 第15-16页 |
3.3 农药对对土壤酶活性的影响 | 第16-17页 |
4 微生物生态的最新研究进展 | 第17-26页 |
4.1 土壤微生物群落结构的概念 | 第17-18页 |
4.2 传统培养法研究土壤微生物多样性 | 第18-19页 |
4.3 荧光原位杂交(FISH)显微技术研究微生物多样性 | 第19-20页 |
4.4 分子生物学方法 | 第20-21页 |
4.5 基因指纹技术 | 第21-26页 |
4.6 磷脂脂肪酸分析(PLFA) | 第26页 |
5 土壤微生物对农药的降解作用与农药污染土壤的生物修复 | 第26-35页 |
5.1 微生物降解机理 | 第27-28页 |
5.2 土壤微生物降解的一般反应类型 | 第28-29页 |
5.3 农药降解菌 | 第29-31页 |
5.4 农药的降解酶及其基因的克隆与表达 | 第31-32页 |
5.5 农药污染土壤的微生物修复 | 第32-35页 |
第二章 二氯喹啉酸对水稻田土壤微生物种群的影响 | 第35-46页 |
1 材料与方法 | 第35-38页 |
1.1 药剂 | 第35页 |
1.2 供试土壤 | 第35-36页 |
1.3 试验设计与实施 | 第36页 |
1.4 微生物数量的测定 | 第36-37页 |
1.5 水田土壤中二氯喹啉酸残留的监测 | 第37-38页 |
1.6 数据分析 | 第38页 |
2 结果与分析 | 第38-44页 |
2.1 二氯喹啉酸对好氧性细菌数量的影响 | 第38-39页 |
2.2 二氯喹啉酸对真菌数量的影响 | 第39页 |
2.3 二氯喹啉酸对放线菌数量的影响 | 第39页 |
2.4 二氯喹啉酸对厌氧性水解性细菌数量的影响 | 第39-40页 |
2.5 二氯喹啉酸对厌氧反硝化细菌数量的影响 | 第40-41页 |
2.6 二氯喹啉酸对产氢产乙酸菌数量的影响 | 第41页 |
2.7 二氯喹啉酸对厌氧固氮菌数量的影响 | 第41-42页 |
2.8 二氯喹啉酸对水稻田土壤中产甲烷菌数量的影响 | 第42-43页 |
2.9 水田土壤中二氯喹啉酸的残留 | 第43-44页 |
3 小结 | 第44-46页 |
第三章 二氯喹啉酸对水稻田土壤酶活性的影响 | 第46-57页 |
1 材料与方法 | 第46-49页 |
1.1 药剂 | 第46-47页 |
1.2 土壤 | 第47页 |
1.3 试验设计与实施 | 第47页 |
1.4 土壤呼吸强度测定 | 第47页 |
1.5 土壤中各种酶活性的测定 | 第47-49页 |
2 结果与讨论 | 第49-56页 |
2.1 二氯喹啉酸对水稻田土壤蛋白酶活性的影响 | 第49-50页 |
2.2 二氯喹啉酸对土壤过氧化氢酶活性的影响 | 第50-51页 |
2.3 二氯喹啉酸对水稻田土壤磷酸酶活性的影响 | 第51-52页 |
2.4 二氯喹啉酸对水稻田土壤脲酶活性的影响 | 第52-53页 |
2.5 二氯喹啉酸对水稻田土壤脱氢酶活性的影响 | 第53-54页 |
2.6 二氯喹啉酸对水稻田土壤蔗糖酶活性的影响 | 第54页 |
2.7 二氯喹啉酸对水稻田土壤呼吸作用的影响 | 第54-56页 |
3 小结 | 第56-57页 |
第四章 二氯喹啉酸对稻田土壤微生物基因多样性的DGGE分子指纹分析 | 第57-79页 |
1 材料与方法 | 第57-63页 |
1.1 药剂 | 第57-58页 |
1.2 供试土壤和菌株Burkholderia cepacia WZ1 | 第58页 |
1.3 试验设计与实施 | 第58页 |
1.4 土壤总DNA的提取 | 第58-59页 |
1.5 DNA的定量和纯度检测 | 第59页 |
1.6 PCR扩增 | 第59页 |
1.7 变性梯度凝胶电泳(DGGE) | 第59-60页 |
1.8 染色 | 第60页 |
1.9 割胶回收 | 第60页 |
1.10 指纹图谱分析 | 第60页 |
1.11 克隆和序列分析 | 第60-63页 |
2 结果与分析 | 第63-77页 |
2.1 特异性引物的PCR扩增 | 第63页 |
2.2 DGGE图谱分析 | 第63-75页 |
2.3 克隆与序列分析 | 第75-77页 |
3 小结 | 第77-79页 |
第五章 二氯喹啉酸对淹水稻田土壤微生物群落功能多样性的影响 | 第79-94页 |
1 材料与方法 | 第79-82页 |
1.1 药剂 | 第79页 |
1.2 土壤 | 第79-80页 |
1.3 试验设计与实施 | 第80页 |
1.4 土壤微生物群落利用碳源功能多样性采用Biolog系统测试 | 第80-81页 |
1.5 数据表达及统计 | 第81-82页 |
2 结果与分析 | 第82-92页 |
2.1 二氯喹啉酸施用后土壤微生物群落功能多样性的变化 | 第82-84页 |
2.2 二氯喹啉酸施用条件下土壤微生物群落功能多样性动力学参数特征 | 第84-87页 |
2.3 二氯喹啉酸施用后土壤的微生物群落丰度和Shannon多样性指数变化 | 第87-89页 |
2.4 二氯喹啉酸施用后土壤的微生物群落利用碳源多样性的主成分分析 | 第89-92页 |
3 小结 | 第92-94页 |
第六章 二氯喹啉酸对稻田土壤典型微生物种的生理毒性研究 | 第94-104页 |
1 材料与方法 | 第95-97页 |
1.1 试剂 | 第95页 |
1.2 供试菌株 | 第95页 |
1.3 培养基 | 第95页 |
1.4 试验设计 | 第95-96页 |
1.5 样品预处理及细胞蛋白质、SOD、CAT和ATP酶活性的测定 | 第96页 |
1.6 PAGE活性染色法分析超氧化物歧化酶 | 第96-97页 |
1.7 数据处理 | 第97页 |
2 结果与讨论 | 第97-102页 |
2.1 不同浓度二氯喹啉酸对细菌中抗氧化酶和ATPase活性的影响 | 第97-99页 |
2.2 细菌生长24h后加入二氯喹啉酸对抗氧化酶活性和ATPase活性的影响 | 第99-101页 |
2.3 PAGE活性染色法观察二氯喹啉酸对细菌SOD酶组成的影响 | 第101-102页 |
3 小结 | 第102-104页 |
第七章 二氯喹啉酸降解细菌的筛选、鉴定及其降解特性研究 | 第104-130页 |
1 材料与方法 | 第104-110页 |
1.1 样品来源及二氯喹啉酸降解细菌的富集、分离和纯化 | 第104-105页 |
1.2 试剂 | 第105页 |
1.3 分离菌株WZ1的形态、生理生化特性 | 第105页 |
1.4 分离菌株WZ1的BIOLOG-GN鉴定 | 第105页 |
1.5 分离菌株WZ1 G+C mol%测定 | 第105-106页 |
1.6 分离菌株WZ1全细胞脂肪酸甲酯分析 | 第106页 |
1.7 分离菌株16S rDNA的PCR扩增、序列测定及系统发育分析 | 第106-107页 |
1.8 分离菌株ITS的PCR扩增、序列测定 | 第107页 |
1.9 抗生素敏感性试验 | 第107页 |
1.10 底物降解广谱性试验 | 第107-108页 |
1.11 分离菌株降解特性研究 | 第108-109页 |
1.12 分离菌株对二氯喹啉酸降解产物的GC/MS测定 | 第109页 |
1.13 二氯喹啉酸诱导对WZ1菌株全细胞蛋白组成的影响 | 第109页 |
1.14 其他二氯喹啉酸降解菌株的鉴定及对二氯喹啉酸降解能力的测定 | 第109-110页 |
2 结果与讨论 | 第110-128页 |
2.1 二氯喹啉酸降解菌形态特性 | 第110页 |
2.2 分离菌株生理鉴定 | 第110-112页 |
2.3 分离菌株的G+C mol%含量 | 第112页 |
2.4 分离菌株全细胞脂肪酸甲酯分析 | 第112页 |
2.5 16S rDNA的序列测定与系统发育分析 | 第112-116页 |
2.6 分离菌株ITS的PCR扩增、序列测定 | 第116-117页 |
2.7 抗生素敏感性试验 | 第117页 |
2.8 底物降解广谱性试验 | 第117-118页 |
2.9 菌株WZ1对二氯喹啉酸的降解 | 第118-121页 |
2.10 降解产物分析 | 第121-124页 |
2.11 诱导蛋白表达图谱 | 第124页 |
2.12 其它二氯喹啉酸降解菌的特性研究 | 第124-127页 |
2.13 二氯喹啉酸降解菌对二氯喹啉酸降解能力研究 | 第127页 |
2.14 二氯喹啉酸降解菌的系统发育分析 | 第127-128页 |
3 小结 | 第128-130页 |
第八章 研究结论及展望 | 第130-135页 |
1 全文主要研究结论 | 第130-132页 |
2 展望 | 第132-135页 |
ABSTRACT | 第135页 |
参考文献 | 第140-151页 |
致谢 | 第151-152页 |
博士研究生学习期间论文发表及获奖情况 | 第152页 |