| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-26页 |
| 1.1 选题背景 | 第11-14页 |
| 1.1.1 电子垃圾及其处置概况 | 第11-12页 |
| 1.1.2 电子垃圾中的阻燃剂 | 第12-14页 |
| 1.2 四溴双酚A和四氯双酚A简介及其去除方法 | 第14-19页 |
| 1.2.1 四溴双酚A和四氯双酚A的性质 | 第14-15页 |
| 1.2.2 四溴双酚A和四氯双酚A在环境中的分布 | 第15-16页 |
| 1.2.3 四溴双酚A和四氯双酚A的去除方法 | 第16-19页 |
| 1.3 双酚A简介及其去除方法 | 第19-22页 |
| 1.3.1 双酚A简介 | 第19-21页 |
| 1.3.2 双酚A的去除方法 | 第21-22页 |
| 1.4 分子生物技术在微生物多样性研究中的应用 | 第22-24页 |
| 1.4.1 分子生物传统分析技术 | 第22-23页 |
| 1.4.2 高通量测序技术简介 | 第23页 |
| 1.4.3 高通量测序在菌群多样性中的应用 | 第23-24页 |
| 1.5 研究目的和内容 | 第24-26页 |
| 1.5.1 研究目的 | 第24-25页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第25页 |
| 1.5.3 研究路线 | 第25-26页 |
| 第二章 实验材料和分析方法 | 第26-36页 |
| 2.1 仪器和实验试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.1 仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第27页 |
| 2.2 四溴双酚A和四氯双酚A厌氧脱卤 | 第27-29页 |
| 2.2.1 底泥的采集和保存 | 第27-28页 |
| 2.2.2 厌氧培养 | 第28-29页 |
| 2.2.3 取样 | 第29页 |
| 2.3 厌氧菌群的分析 | 第29-34页 |
| 2.3.1 底泥DNA提取 | 第30-31页 |
| 2.3.2 PCR和纯化 | 第31页 |
| 2.3.3 数据质量控制 | 第31-32页 |
| 2.3.4 生物信息分析 | 第32-34页 |
| 2.4 双酚A好氧降解 | 第34页 |
| 2.4.1 双酚A降解菌的驯化 | 第34页 |
| 2.4.2 微生物降解双酚A正交实验 | 第34页 |
| 2.5 化学分析 | 第34-36页 |
| 2.5.1 四溴双酚A和四氯双酚A的定量 | 第34-35页 |
| 2.5.2 双酚A的定量 | 第35页 |
| 2.5.3 双酚A降解体系总有机碳的测定 | 第35页 |
| 2.5.4 双酚A降解中间产物的定性 | 第35-36页 |
| 第三章 四氯双酚A和四溴双酚A的厌氧脱卤 | 第36-41页 |
| 3.1 底泥中四氯双酚A的脱氯 | 第36-38页 |
| 3.2 底泥中四溴双酚A脱溴及其与四氯双酚A脱氯对比 | 第38-40页 |
| 3.3 本章小结 | 第40-41页 |
| 第四章 基于 16S rRNA基因测序的菌群变化 | 第41-58页 |
| 4.1 基础数据 | 第41页 |
| 4.2 Alpha多样性 | 第41-45页 |
| 4.3 Beta多样性 | 第45-46页 |
| 4.4 各分类水平上的菌群分析 | 第46-57页 |
| 4.4.1 高分类水平的菌群分析 | 第46-52页 |
| 4.4.2 属水平菌群分析 | 第52-57页 |
| 4.5 本章小结 | 第57-58页 |
| 第五章 双酚A的好氧降解 | 第58-63页 |
| 5.1 好氧降解双酚A | 第58-60页 |
| 5.2 双酚A降解途径 | 第60-62页 |
| 5.3 本章小结 | 第62-63页 |
| 结论与展望 | 第63-65页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-79页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 附件 | 第81页 |