| 摘要 | 第14-18页 |
| Abstract | 第18-22页 |
| 第一章 绪论 | 第23-62页 |
| 引言 | 第23-25页 |
| 1.1 荧光学原理 | 第25-35页 |
| 1.1.1 荧光分子的激发和发射过程 | 第25-27页 |
| 1.1.2 分子内电荷转移(ICT)、扭曲的分子内电荷转移(TICT)和分子转子 | 第27-29页 |
| 1.1.3 光诱导电子转移(PET)过程 | 第29-30页 |
| 1.1.4 荧光共振能量转移(FRET)原理 | 第30-31页 |
| 1.1.5 激发态分子内质子转移过程(ESIPT) | 第31-32页 |
| 1.1.6 激基缔合物与激基复合物 | 第32-33页 |
| 1.1.7 H-聚集和J-聚集 | 第33-35页 |
| 1.2 细胞膜上脂筏微区和非脂筏微区荧光探针的研究现状 | 第35-42页 |
| 1.2.1 脂筏区、非脂筏区简介 | 第35-37页 |
| 1.2.2 荧光标记的脂类化合物作为脂筏、非脂筏探针 | 第37-38页 |
| 1.2.3 荧光标记的霍乱霉素B亚基作为脂筏探针 | 第38-39页 |
| 1.2.4 成像脂筏微区的黏度探针 | 第39-40页 |
| 1.2.5 双色成像脂筏/非脂筏微区的极性探针 | 第40-42页 |
| 1.3 成像细胞内微环境的荧光探针的研究现状 | 第42-50页 |
| 1.3.1 成像细胞内微环境的生物学意义 | 第42-43页 |
| 1.3.2 pH值探针的研究现状 | 第43-47页 |
| 1.3.3 黏度探针的研究现状 | 第47-50页 |
| 1.4 本论文的主要内容与创新 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-62页 |
| 第二章 探针的合成与表征 | 第62-78页 |
| 2.1 成像脂筏、非脂筏微区探针的合成与表征 | 第62-66页 |
| 2.1.1 2,7-9E-BHVC12的合成步骤 | 第62-64页 |
| 2.1.2 3,6-9E-BHVC12的合成步骤 | 第64-66页 |
| 2.2 环化—开环型pH值探针的合成 | 第66-73页 |
| 2.2.1 探针pH-1的合成步骤 | 第66-69页 |
| 2.2.2 探针pH-2的合成步骤 | 第69-70页 |
| 2.2.3 探针pH-3的合成步骤 | 第70-71页 |
| 2.2.4 探针pH-4的合成步骤 | 第71页 |
| 2.2.5 探针pH-5的合成步骤 | 第71-72页 |
| 2.2.6 探针pH-6的合成步骤 | 第72-73页 |
| 2.3 黏度响应探针的合成步骤 | 第73-75页 |
| 2.3.1 探针R-1的合成步骤 | 第73-74页 |
| 2.3.2 探针R-2的合成步骤 | 第74页 |
| 2.3.3 探针V-1的合成步骤 | 第74-75页 |
| 2.4 染料分子和相关探针分子的合成步骤 | 第75-78页 |
| 2.4.1 HMTP的合成步骤 | 第75-76页 |
| 2.4.2 HMTP-MT的合成步骤 | 第76-77页 |
| 2.4.3 HMTP-LY的合成步骤 | 第77-78页 |
| 第三章 双色清晰区分成像细胞膜上脂筏/非脂筏微区的探针 | 第78-106页 |
| 引言 | 第78-79页 |
| 3.1 双色成像细胞膜上脂筏、非脂筏微区荧光探针的设计思路 | 第79-82页 |
| 3.2 实验方法 | 第82-84页 |
| 3.2.1 光谱测试方法 | 第82页 |
| 3.2.2 细胞培养和染色方法 | 第82页 |
| 3.2.3 细胞毒性测试方法 | 第82-83页 |
| 3.2.4 囊泡的制备和染色方法 | 第83-84页 |
| 3.2.5 实彩图片的获取方法 | 第84页 |
| 3.3 探针对细胞膜的选择性以及体外光谱性质 | 第84-87页 |
| 3.3.1 探针对细胞膜的选择性 | 第84-85页 |
| 3.3.2 探针的吸收、发射性能 | 第85-87页 |
| 3.4 双色成像人工囊泡上的脂筏、非脂筏微区 | 第87-92页 |
| 3.5 机理探讨 | 第92-94页 |
| 3.6 活细胞上的脂筏、非脂筏微区的成像分析 | 第94-99页 |
| 3.7 构效关系研究 | 第99-100页 |
| 3.8 毒性测试 | 第100-101页 |
| 3.9 小结 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-106页 |
| 第四章 基于特殊环化反应的双光子比例型pH值探针 | 第106-142页 |
| 引言 | 第106-109页 |
| 4.1 基于环化—开环反应的pH值探针设计 | 第109-111页 |
| 4.2 光学性能测试 | 第111-122页 |
| 4.2.1 探针pH-1的光学性能 | 第111-112页 |
| 4.2.2 探针pH-2的光学性能 | 第112-115页 |
| 4.2.3 探针pH-3的光学性能 | 第115-118页 |
| 4.2.4 探针pH-4的光学性能 | 第118-119页 |
| 4.2.5 探针pH-5的光学性能 | 第119-121页 |
| 4.2.6 探针pH-6的光学性能 | 第121-122页 |
| 4.2.7 探针光学性能总结 | 第122页 |
| 4.3 对溶酶体pH值的单、双光子比例型检测 | 第122-128页 |
| 4.3.1 使用探针分子pH-3成像溶酶体pH值变化 | 第122-126页 |
| 4.3.2 使用探针分子pH-2成像溶酶体pH值 | 第126-128页 |
| 4.4 对线粒体pH值的单光子比例成像 | 第128-130页 |
| 4.5 其它探针在活细胞中的染色结果 | 第130-134页 |
| 4.6 机理探讨与结果讨论 | 第134-138页 |
| 4.6.1 探针对pH值响应的机理探讨 | 第134-137页 |
| 4.6.2 探针pKa与结构的关系 | 第137-138页 |
| 4.6.3 探针染色位置与结构的关系 | 第138页 |
| 4.7 小结 | 第138-139页 |
| 参考文献 | 第139-142页 |
| 第五章 单、双光子黏度探针的设计与合成及其在活细胞成像中的应用 | 第142-158页 |
| 引言 | 第142页 |
| 5.1 黏度探针的设计及实验方法 | 第142-144页 |
| 5.1.1 探针设计思路 | 第142-143页 |
| 5.1.2 实验方法 | 第143-144页 |
| 5.2 核仁探针R-1和R-2在细胞成像中的应用 | 第144-152页 |
| 5.2.1 探针R-1和R-2的黏度响应测试 | 第144-145页 |
| 5.2.2 探针对DNA、RNA的响应测试 | 第145-147页 |
| 5.2.3 细胞染色结果 | 第147-150页 |
| 5.2.4 机理探讨 | 第150-152页 |
| 5.3 探针V-1在细胞成像中的应用 | 第152-155页 |
| 5.3.1 探针对黏度的响应 | 第152-154页 |
| 5.3.2 探针在活细胞成像中的应用 | 第154-155页 |
| 5.4 小结 | 第155-156页 |
| 参考文献 | 第156-158页 |
| 第六章 小分子结构双光子染料的设计及其在生物成像中的应用 | 第158-172页 |
| 引言 | 第158-159页 |
| 6.1 染料分子的设计 | 第159-160页 |
| 6.2 HMTP的光学性能测试 | 第160-162页 |
| 6.3 HMTP-MT在活细胞成像中的应用 | 第162-165页 |
| 6.4 HMTP-LY在活细胞中的成像应用 | 第165-168页 |
| 6.5 毒性测试 | 第168页 |
| 6.6 小结 | 第168-169页 |
| 参考文献 | 第169-172页 |
| 第七章 总结与展望 | 第172-175页 |
| 7.1 论文内容小结 | 第172-174页 |
| 7.2 创新点 | 第174页 |
| 7.3 有待开展的工作 | 第174-175页 |
| 致谢 | 第175-176页 |
| 攻读博士学位期间取得的成果 | 第176-177页 |
| 附录 | 第177-223页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第223页 |
