| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-16页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第16-26页 |
| 第一节 实验材料 | 第16-17页 |
| ·实验动物 | 第16页 |
| ·主要试剂 | 第16-17页 |
| ·主要仪器 | 第17页 |
| 第二节 实验方法 | 第17-26页 |
| ·研究对象的纳入排除标准 | 第17页 |
| ·实验动物分组 | 第17-18页 |
| ·脓毒症模型建立 | 第18页 |
| ·磁共振成像 | 第18-19页 |
| ·血清和脑组织标本的制备 | 第19-20页 |
| ·大鼠血清NSE和S100beta蛋白含量检测 | 第20-21页 |
| ·脑组织切片制作及染色方法 | 第21-24页 |
| ·统计学方法 | 第24-25页 |
| ·技术线路图 | 第25-26页 |
| 第三章 实验结果 | 第26-40页 |
| 第一节 一般情况 | 第26页 |
| 第二节 临床表现 | 第26页 |
| 第三节 各组形态学成像的比较 | 第26-27页 |
| 第四节 各组体内1H波谱的比较 | 第27-30页 |
| 第五节 大鼠血清NSE和S100beta蛋白含量的检测结果 | 第30-36页 |
| ·大鼠血清NSE含量的检测结果 | 第30-33页 |
| ·大鼠血清S100beta蛋白含量的检测结果 | 第33-36页 |
| 第六节 右侧海马病理镜检结果 | 第36-40页 |
| ·HE染色镜检结果(图3-8) | 第36-37页 |
| ·Nissl染色镜检结果(图3-9) | 第37页 |
| ·TUNEL染色镜检结果(图3-10) | 第37-40页 |
| 第四章 讨论 | 第40-48页 |
| 第一节 脓毒症模型的选择 | 第40-41页 |
| 第二节 1H-MRS兴趣区的选择 | 第41-42页 |
| 第三节 脓毒症引起脑损伤病理的可能机制 | 第42-44页 |
| 第四节 脓毒症引起脑损伤的MRI/MRS分析 | 第44-47页 |
| ·形态学成像分析 | 第44-46页 |
| ·磁共振波谱分析 | 第46-47页 |
| 第五节 研究缺陷 | 第47-48页 |
| 第五章 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 英文缩略词索引 | 第52-54页 |
| 成果 | 第54-55页 |
| 综述 | 第55-69页 |
| 1 脓毒症脑损伤的概况 | 第55-58页 |
| ·脓毒症的定义演变及分类 | 第55-56页 |
| ·脓毒症的流行病学 | 第56-57页 |
| ·脑损伤的定义及分类 | 第57页 |
| ·脓毒症的神经系统并发症 | 第57-58页 |
| 2 脓毒症脑损伤的常用诊断技术 | 第58-60页 |
| ·神经电生理检查 | 第59页 |
| ·生化检测 | 第59-60页 |
| ·影像学检查 | 第60页 |
| 3 磁共振波谱在其它原因导致脑损伤的应用 | 第60-63页 |
| ·磁共振波谱的基本原理 | 第60-61页 |
| ·磁共振波谱对脑损伤的应用研究状况 | 第61-63页 |
| 4 总结与展望 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 统计学证明 | 第71页 |