| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-10页 |
| 1 引言 | 第10-19页 |
| ·影响植物氮素吸收的因素 | 第10-12页 |
| ·土壤因素 | 第10-11页 |
| ·根系的影响 | 第11-12页 |
| ·环境影响 | 第12页 |
| ·植物氮素代谢研究 | 第12-16页 |
| ·氮素的生理功能 | 第12-13页 |
| ·氮素的代谢途径 | 第13-15页 |
| ·甜菜氮代谢相关酶的研究 | 第15-16页 |
| ·植物种属AMT蛋白家族 | 第16-17页 |
| ·植物种属中的AMT1多基因家族 | 第16页 |
| ·AtAMT1；1的特点 | 第16-17页 |
| ·甜菜转基因研究进展 | 第17-19页 |
| ·研究目的意义 | 第19页 |
| 2 实验材料与方法 | 第19-24页 |
| ·实验材料 | 第19-20页 |
| ·植物材料 | 第19页 |
| ·菌种材料 | 第19-20页 |
| ·盆栽实验设计 | 第20页 |
| ·纸筒育苗 | 第20-21页 |
| ·转AtAMT1；1基因植株的分子检测方法 | 第21-24页 |
| ·实验药品及仪器 | 第21页 |
| ·转基因植株PCR检测方法 | 第21-24页 |
| ·甜菜组织总DNA的提取 | 第21-22页 |
| ·工程菌质粒DNA的提取 | 第22页 |
| ·培养基的制备 | 第22页 |
| ·农杆菌的活化与保存 | 第22页 |
| ·质粒DNA的提取 | 第22页 |
| ·转基因植株的PCR检测 | 第22页 |
| ·转基因甜菜RT-PCR检测方法 | 第22-24页 |
| ·提取RNA所需试剂配制与器皿处理方法 | 第23页 |
| ·总RNA提取试剂盒提取植株总RNA | 第23页 |
| ·RNA定量 | 第23页 |
| ·RT-PCR反应步骤 | 第23-24页 |
| ·转基因甜菜生理指标测定 | 第24页 |
| 3 结果与分析 | 第24-32页 |
| ·转AtAMT1；1基因甜菜的分子检测 | 第24-27页 |
| ·质粒目的基因鉴定 | 第24-25页 |
| ·转基因甜菜的PCR检测 | 第25-26页 |
| ·转基因甜菜RT-PCR检测 | 第26-27页 |
| ·转基因植株的功能鉴定 | 第27-29页 |
| ·低氮胁迫对甜菜叶绿素含量的影响 | 第27-29页 |
| ·低氮胁迫对甜菜氨态氮含量的影响 | 第29页 |
| ·转基因和野生型甜菜产量、含糖率及产糖量的比较 | 第29-32页 |
| ·转基因甜菜与野生型甜菜的表性差异观察 | 第30页 |
| ·转基因甜菜与野生型甜菜的形态比较 | 第30-31页 |
| ·转基因与野生型甜菜根重、含糖率比较 | 第31-32页 |
| 4 讨论 | 第32-35页 |
| ·转AtAMT1;1基因甜菜表达检测及遗传稳定性的分析 | 第32-33页 |
| ·转基因甜菜的形态观察 | 第33-34页 |
| ·转基因甜菜对氨态氮的转运和叶绿素合成的影响 | 第34-35页 |
| 5 结论 | 第35-36页 |
| 致谢 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-45页 |
| 作者简介 | 第45页 |