英文缩略词表 | 第1-10页 |
中文摘要 | 第10-13页 |
ABSTRACT | 第13-17页 |
引言 | 第17-21页 |
第一部分 糖尿病并发抑郁症细胞模型的建立 | 第21-42页 |
1 实验材料 | 第21-23页 |
·实验动物 | 第21页 |
·主要实验试剂及溶液 | 第21-22页 |
·主要仪器 | 第22页 |
·主要溶液配制 | 第22-23页 |
2 实验方法 | 第23-30页 |
·细胞培养 | 第23-25页 |
·物品准备 | 第23-24页 |
·L-多聚赖氨酸包被培养板 | 第24页 |
·取材前准备工作 | 第24页 |
·胎鼠海马组织提取、海马神经元细胞分离和培养 | 第24-25页 |
·DD诱导剂的选择 | 第25页 |
·实验分组 | 第25页 |
·DD细胞模型的建立 | 第25-26页 |
·实验分组 | 第25-26页 |
·指标检测 | 第26-30页 |
·原代海马神经元细胞形态与功能检测 | 第26-28页 |
·神经细胞形态学检查 | 第26页 |
·神经细胞鉴定 | 第26-27页 |
·MTT比色法检测神经细胞存活率 | 第27页 |
·HE染色 | 第27-28页 |
·TUNEL染色法检测神经细胞凋亡率 | 第28页 |
·葡萄糖消耗量检测 | 第28-29页 |
·神经递质检测 | 第29页 |
·CREB、BDNF含量检测 | 第29-30页 |
·统计学处理 | 第30页 |
3 实验结果 | 第30-37页 |
·DD诱导剂的选择 | 第30-32页 |
·海马神经元细胞形态与功能检测 | 第30-32页 |
·神经元细胞形态学检查 | 第30页 |
·神经元细胞鉴定 | 第30-31页 |
·MTT法检测神经细胞存活率 | 第31-32页 |
·DD细胞模型的建立 | 第32-37页 |
·原代海马神经元细胞形态与功能检测 | 第32-34页 |
·神经细胞形态学检查 | 第32页 |
·神经细胞鉴定 | 第32页 |
·MTT法检测神经细胞存活率 | 第32-33页 |
·HE染色 | 第33页 |
·TUNEL染色 | 第33-34页 |
·葡萄糖消耗量检测 | 第34-35页 |
·神经递质DA、NE、5-HT含量检测 | 第35-36页 |
·BDNF、CREB含量检测 | 第36-37页 |
4 讨论 | 第37-42页 |
·DD细胞建模方法的选择 | 第37-39页 |
·DD细胞模型评价指标的确立 | 第39-41页 |
·糖尿病样指标评价 | 第39-40页 |
·抑郁样指标评价 | 第40-41页 |
·DD细胞模型与单纯糖尿病细胞模型、抑郁症细胞模型的区别 | 第41-42页 |
第二部分 左归降糖解郁方对糖尿病并发抑郁症模型细胞的保护作用 | 第42-52页 |
1 实验材料 | 第42-43页 |
·实验动物 | 第42页 |
·主要实验试剂及溶液 | 第42页 |
·主要仪器 | 第42页 |
·主要溶液配制 | 第42-43页 |
2 实验方法 | 第43-44页 |
·细胞培养 | 第43页 |
·左归降糖解郁方对糖尿病并发抑郁症模型细胞的保护作用研究 | 第43页 |
·实验分组 | 第43页 |
·指标检测 | 第43页 |
·统计学处理 | 第43-44页 |
3 实验结果 | 第44-50页 |
·海马神经元细胞形态与功能检测 | 第44-46页 |
·神经元细胞形态学检查 | 第44页 |
·神经元细胞鉴定 | 第44页 |
·MTT法检测神经细胞存活率 | 第44-45页 |
·HE染色 | 第45页 |
·TUNEL染色 | 第45-46页 |
·葡萄糖消耗量检测 | 第46-47页 |
·神经递质DA、NE、5-HT含量检测 | 第47-48页 |
·BDNF、CREB含量检测 | 第48-49页 |
·NR2A、NR2B含量检测 | 第49-50页 |
4 讨论 | 第50-52页 |
·左归降糖解郁方的组方原则及药物配伍意义 | 第50-51页 |
·左归降糖解郁方对DD模型细胞的保护作用 | 第51-52页 |
结论 | 第52-53页 |
创新点 | 第53-54页 |
致谢 | 第54-56页 |
参考文献 | 第56-60页 |
附录 | 第60-69页 |
综述 | 第60-68页 |
参考文献 | 第65-68页 |
攻读硕士期间发表的论文 | 第68-69页 |
攻读硕士期间参与的课题 | 第69页 |