| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-14页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 第一章 AT-п细胞的分离,纯化,鉴定和培养 | 第16-19页 |
| ·材料 | 第16页 |
| ·实验动物 | 第16页 |
| ·主要试剂 | 第16页 |
| ·主要仪器和设备 | 第16页 |
| ·方法与步骤 | 第16-19页 |
| ·动物准备 | 第16页 |
| ·AT-п细胞的分离 | 第16-17页 |
| ·AT-п细胞纯化和培养 | 第17页 |
| ·台盼蓝法鉴定细胞活力 | 第17页 |
| ·细胞鉴定 | 第17-18页 |
| ·细胞染色和电镜鉴定结果 | 第18页 |
| ·原代培养观察 | 第18-19页 |
| 第二章 辛伐他汀对LPS诱导的AT-п 细胞α-ENaCmRNA的影响 | 第19-23页 |
| ·材料 | 第19-20页 |
| ·主要试剂 | 第19页 |
| ·主要仪器和设备 | 第19页 |
| ·引物资料 | 第19-20页 |
| ·方法与步骤 | 第20-22页 |
| ·药物处理 | 第20页 |
| ·细胞准备 | 第20页 |
| ·细胞分组 | 第20页 |
| ·酶联免疫吸附法分析TNF-α,IL-1β | 第20页 |
| ·AT-Ⅱ细胞α-ENaCmRNA的检测 | 第20-22页 |
| ·数据处理和统计分析 | 第22-23页 |
| 第三章 结果 | 第23-36页 |
| ·干预后1h上清中TNF-α,IL-1β及AT-Ⅱ细胞α-ENaCmRNA表达的结果 | 第23-27页 |
| ·干预后1h上清中TNF-α的浓度 | 第23-24页 |
| ·干预后1h上清中IL-1β的浓度 | 第24-25页 |
| ·干预后1h细胞中α-ENaCmRNA表达 | 第25-27页 |
| ·干预后12h上清中TNF-α,IL-1β及AT-Ⅱ细胞α-ENaCmRNA表达的结果 | 第27-31页 |
| ·干预后12h上清中TNF-α的浓度 | 第27-28页 |
| ·干预后12h上清中IL-1β的浓度 | 第28-29页 |
| ·干预后12h细胞中α-ENaCmRNA表达 | 第29-31页 |
| ·干预后24h的上清中TNF-α,IL-1β及AT-Ⅱ细胞α-ENaCmRNA结果 | 第31-36页 |
| ·干预后24h上清中TNF-α的浓度 | 第31-32页 |
| ·干预后24h上清中的IL-1β浓度 | 第32-33页 |
| ·干预后24h AT-Ⅱ细胞中α-ENaCmRNA的表达 | 第33-36页 |
| 第四章 讨论 | 第36-40页 |
| ·大鼠肺泡Ⅱ型上皮细胞体外培养 | 第36页 |
| ·辛伐他汀对LPS诱导的AT-Ⅱ细胞α-ENaC的影响 | 第36-39页 |
| ·LPS诱导AT-Ⅱ细胞内源性TNF-α,IL-1β释放 | 第36-38页 |
| ·辛伐他汀对LPS诱导的AT-Ⅱ细胞的TNF-α,IL-1β释放的抑制作用 | 第38页 |
| ·LPS促使大鼠AT-Ⅱ细胞α-ENaCmRNA下调 | 第38页 |
| ·TNF-α,IL-1β对ENaC的调节 | 第38-39页 |
| ·辛伐他汀通过调节AT-Ⅱ细胞TNF-α,IL-1β的分泌阻止LPS诱导的大鼠AT-Ⅱ细胞α-ENaCmRNA下调 | 第39页 |
| ·研究的临床意义 | 第39-40页 |
| 第五章 结论 | 第40-41页 |
| 附图 | 第41-44页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 综述 | 第47-55页 |
| 参考文献 | 第52-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 攻读学位期间发表的论文及学习经历 | 第56页 |
