| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-9页 |
| 缩略词表 | 第9-11页 |
| 1 绪论 | 第11-21页 |
| ·引言 | 第11页 |
| ·课题研究背景 | 第11-19页 |
| ·禽流感病毒 H5N1 的生物学特性与流行病学 | 第11-13页 |
| ·禽流感病毒 H5N1 的防治、诊断及 DCs 疫苗 | 第13-14页 |
| ·树突状细胞的抗原交叉递呈机制 | 第14-19页 |
| ·小结 | 第19页 |
| ·研究的目的、意义及主要内容 | 第19-20页 |
| ·目的与意义 | 第19页 |
| ·主要内容 | 第19-20页 |
| ·本课题的创新之处 | 第20页 |
| ·技术路线 | 第20-21页 |
| 2 禽流感病毒 H5N1 神经氨酸酶 NA 的原核表达、纯化及鉴定 | 第21-33页 |
| ·引言 | 第21页 |
| ·材料与仪器 | 第21-24页 |
| ·实验菌株、质粒 | 第21页 |
| ·仪器与设备 | 第21-22页 |
| ·试剂的配制 | 第22-24页 |
| ·方法 | 第24-28页 |
| ·PIERS2-EGFP-NA 的鉴定 | 第24-25页 |
| ·表达载体 pET32a-NA 的构建 | 第25-27页 |
| ·表达载体 pET32a-NA 的诱导表达 | 第27页 |
| ·NA 蛋白的纯化、鉴定 | 第27-28页 |
| ·结果 | 第28-32页 |
| ·PIERS2-EGFP-NA 的鉴定 | 第28页 |
| ·表达载体 pET32a-NA 的构建 | 第28-30页 |
| ·NA 蛋白的表达与鉴定 | 第30-31页 |
| ·NA 蛋白的纯化与鉴定 | 第31-32页 |
| ·本章小结 | 第32-33页 |
| 3 小鼠骨髓来源树突状细胞的分离与鉴定 | 第33-40页 |
| ·引言 | 第33页 |
| ·材料与仪器 | 第33-34页 |
| ·动物与试剂 | 第33-34页 |
| ·仪器与设备 | 第34页 |
| ·试剂的配制 | 第34页 |
| ·方法 | 第34-36页 |
| ·小鼠骨髓单核细胞悬液的制备 | 第34页 |
| ·BMDC 的诱导培养 | 第34-35页 |
| ·BMDC 的表型鉴定 | 第35页 |
| ·BMDC 的功能测定 | 第35-36页 |
| ·结果 | 第36-39页 |
| ·BMDC 的形态学观察 | 第36-37页 |
| ·BMDC 的表型鉴定 | 第37-38页 |
| ·BMDC 的功能鉴定 | 第38-39页 |
| ·本章小结 | 第39-40页 |
| 4 禽流感病毒 H5N1 NA 抗原被 DC 交叉递呈机理的研究 | 第40-60页 |
| ·引言 | 第40页 |
| ·材料与仪器 | 第40-41页 |
| ·试剂和材料 | 第40-41页 |
| ·仪器与设备 | 第41页 |
| ·试剂的配制 | 第41页 |
| ·方法 | 第41-48页 |
| ·NA 抗原负载 DC 的制备 | 第41-42页 |
| ·NA 抗原特异性 CTL 的建立 | 第42-44页 |
| ·NA 抗原对 DC 成熟的影响 | 第44页 |
| ·NA 抗原在 DC 细胞中存储部位 | 第44-45页 |
| ·NA 抗原致敏 DC 中细胞器膜之间的重新分布 | 第45-46页 |
| ·IFN-gama Eli-spot 检测 NA 抗原的交叉递呈路径 | 第46-48页 |
| ·结果 | 第48-58页 |
| ·NA 抗原诱导 DC 的成熟 | 第48-49页 |
| ·NA 抗原特异性 CTL 细胞的建立 | 第49-51页 |
| ·NA 抗原被 DC 细胞内化后逆向运转至胞浆中的亚细胞腔室 | 第51-52页 |
| ·NA 抗原定位"融合"腔室（兼备 ER 和 MIIC 特征） | 第52-54页 |
| ·IFN-gama Eli-spot 检测 NA 抗原的交叉递呈 | 第54-57页 |
| ·NA 抗原的“ER-内吞体”融合交叉递呈路径 | 第57-58页 |
| ·本章小结 | 第58-60页 |
| 5 结论与展望 | 第60-63页 |
| ·主要结论及讨论 | 第60-61页 |
| ·后续研究工作与展望 | 第61-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-69页 |
| 附录 | 第69页 |
| A. 作者在攻读硕士学位期间发表的论文目录 | 第69页 |
| B. 参加科研项目情况 | 第69页 |
