| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩写 | 第7-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-16页 |
| ·干细胞 | 第10-11页 |
| ·干细胞简介 | 第10页 |
| ·P19EC 细胞 | 第10-11页 |
| ·转录因子 | 第11-13页 |
| ·叉头匡家族转录因子 | 第11-12页 |
| ·转录因子FoxA1 | 第12页 |
| ·转录因子FoxM1 | 第12-13页 |
| ·维甲酸（RA）诱导干细胞的神经分化 | 第13-14页 |
| ·维甲酸简介 | 第13页 |
| ·维甲酸诱导P19EC 细胞的神经分化 | 第13-14页 |
| ·神经干细胞 | 第14页 |
| ·本文构思 | 第14-16页 |
| ·研究目的及意义 | 第14页 |
| ·研究方法和技术 | 第14-16页 |
| 第2章 表达质粒的构建 | 第16-30页 |
| ·前言 | 第16-17页 |
| ·实验材料 | 第17页 |
| ·实验方法 | 第17-24页 |
| ·引物的设计及目的基因的克隆 | 第17-19页 |
| ·酶切、纯化、连接及转化 | 第19-21页 |
| ·质粒的小提及酶切鉴定 | 第21页 |
| ·质粒的转染及荧光素酶报告基因检测 | 第21-23页 |
| ·质粒大提 | 第23-24页 |
| ·实验结果 | 第24-28页 |
| ·目的基因rFoxA1 的PCR 产物电泳图 | 第24-25页 |
| ·质粒电泳图 | 第25页 |
| ·酶切鉴定的电泳结果 | 第25-26页 |
| ·质粒图谱 | 第26页 |
| ·质粒共转染及荧光素酶报告基因检测 | 第26-28页 |
| ·质粒大提 | 第28页 |
| ·讨论 | 第28-30页 |
| 第3章 P19 GFPFoxA1 稳定高表达细胞株的构建及表型分 析 | 第30-48页 |
| ·前言 | 第30页 |
| ·实验材料 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-41页 |
| ·P19 细胞的培养及质粒转染 | 第31-33页 |
| ·G418 筛选细胞株 | 第33-34页 |
| ·细胞株鉴定及分析 | 第34-41页 |
| ·实验结果 | 第41-46页 |
| ·P19 GFPFoxA1 稳定高表达细胞株的鉴定 | 第41-42页 |
| ·P19 GFPFoxA1 稳定高表达细胞株的分析 | 第42-46页 |
| ·讨论 | 第46-48页 |
| 第4章 P19 GFPFoxM1 稳定高表达细胞株的构建及表型分 析 | 第48-53页 |
| ·前言 | 第48页 |
| ·实验材料 | 第48-49页 |
| ·实验方法 | 第49页 |
| ·P19 GFPFoxM1 细胞株的构建 | 第49页 |
| ·细胞株的鉴定及分析 | 第49页 |
| ·实验结果 | 第49-52页 |
| ·P19 GFPFoxM1 稳定高表达细胞株的鉴定 | 第49-50页 |
| ·P19 GFPFoxM1 细胞表型分析 | 第50-52页 |
| ·讨论 | 第52-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 附录A 攻读硕士学位期间发表的论文目录 | 第62-63页 |
| 附录B 常用缓冲液和试剂配方 | 第63-65页 |
| 附录C 常用仪器 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
