| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-10页 |
| 第一部分 前言 | 第10-16页 |
| 第二部分 灵芝肽的分离与纯化 | 第16-39页 |
| 1． 材料与方法 | 第16-22页 |
| 1．1 实验材料 | 第16-18页 |
| 1．2 研究方法 | 第18-22页 |
| 1．2．1 脱脂对灵芝水浸提物抑制自由基活性的影响 | 第18页 |
| 1．2．2 灵芝中抑制羟基自由基活性成分提取条件的确定 | 第18页 |
| 1．2．3 灵芝水提液中不同组分的初步分离及活性比较 | 第18-19页 |
| 1．2．4 灵芝肽的分离 | 第19-20页 |
| 1．2．5 灵芝肽的基本理化性质测定 | 第20-21页 |
| 1．2．6 灵芝肽的RP-HPLC分析 | 第21页 |
| 1．2．7 灵芝肽的毛细管电泳分析 | 第21-22页 |
| 2． 结果与讨论 | 第22-39页 |
| 2．1 浸提工艺的确定 | 第22-27页 |
| 2．1．1 脱脂对灵芝水提液抑制羟基自由基活性的影响 | 第22-23页 |
| 2．1．2 灵芝中抑制羟基自由基活性成分提取条件的确定 | 第23-27页 |
| 2．2 灵芝浸提液中不同组分的初步分离及其活性测定 | 第27页 |
| 2．3 灵芝肽的分离及基本理化性质的测定 | 第27-35页 |
| 2．3．1 超滤膜透过物GLL中的氨基酸类，肽类的分离分级 | 第27-30页 |
| 2．3．2 还原能力测定 | 第30页 |
| 2．3．3 各级分总糖及总氮含量分析 | 第30-31页 |
| 2．3．4 GLL及灵芝肽GLP-Ⅰ、GLP-Ⅱ的氨基酸组成分析 | 第31-34页 |
| 2．3．5 氧化-还原电位的测定 | 第34页 |
| 2．3．6 灵芝肽GLP-Ⅰ及GLPS分子量的测定 | 第34-35页 |
| 2．4 灵芝肽的HPLC及毛细管电泳法初步分离 | 第35-39页 |
| 2．4．1 灵芝肽的RP-HPLC法分离 | 第35-37页 |
| 2．4．2 灵芝肽的毛细管电泳法分离 | 第37-39页 |
| 第三部分 生物活性研究 | 第39-64页 |
| 1 材料与方法 | 第39-46页 |
| 1．1 实验材料 | 第39-40页 |
| 1．2 研究方法 | 第40-46页 |
| 1．2．1 灵芝肽的抗氧化特性 | 第40-44页 |
| 1．2．2 GLP-Ⅱ、GLL及超滤截留物GLH的生物活性 | 第44-46页 |
| 2． 结果与讨论 | 第46-64页 |
| 2．1 灵芝肽GLP-Ⅰ的抗氧化性能 | 第48-58页 |
| 2．1．1 在油脂体系中的抗氧化作用 | 第48-51页 |
| 2．1．1．1 对脂旨质过氧化的抑制作用 | 第48-50页 |
| 2．1．1．2 对脂肪氧合酶的影响 | 第50-51页 |
| 2．1．2 灵芝肽GLP-Ⅰ在非脂质体系对自由基的抑制作用 | 第51-54页 |
| 2．1．2．1 对羟基自由基的抑制作用 | 第51-53页 |
| 2．1．2．2 对超氧阴离子自由基的抑制作用 | 第53-54页 |
| 2．1．3 灵芝肽GLP-Ⅰ的动物体外抗氧化能力 | 第54-58页 |
| 2．1．3．1 对红细胞（RBC）自氧化溶血的影响 | 第54-55页 |
| 2．1．3．2 对小鼠肝组织匀浆MDA生成的影响 | 第55-56页 |
| 2．1．3．3 对小鼠线粒体的影响 | 第56-58页 |
| 2．2 GLP-Ⅱ、GLL及GLH的生物活性 | 第58-64页 |
| 2．2．1 GLP-Ⅱ对四氧嘧啶诱导型糖尿病的治疗作用 | 第58-60页 |
| 2．2．2 GLL对正常小鼠抗疲劳能力的影响 | 第60-61页 |
| 2．2．3 GLL对正常小鼠免疫功能的影响 | 第61-62页 |
| 2．2．4 GLL对小鼠生殖器周脂肪的影响 | 第62-64页 |
| 第四部分 结论 | 第64-67页 |
| 参考文献 | 第67-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
