中文摘要 | 第1-9页 |
Abstract | 第9-17页 |
第1章 绪论 | 第17-26页 |
·凝血酶的分子功能特性 | 第17-18页 |
·凝血酶的产生 | 第18页 |
·蛋白酶激活受体 | 第18-19页 |
·内源性凝血酶抑制剂 | 第19-20页 |
·凝血酶在脑内的作用 | 第20-24页 |
·抗凝血酶治疗 | 第24-26页 |
第2章 蛋白酶激活受体-1 介导凝血酶引起的脑损伤 | 第26-42页 |
引言 | 第26页 |
材料与方法 | 第26-31页 |
·主要实验仪器及试剂 | 第26-27页 |
·实验动物 | 第27页 |
·动物模型的建立 | 第27页 |
·实验分组 | 第27页 |
·Fluoro-Jade C 染色 | 第27-28页 |
·PANT 染色 | 第28页 |
·水含量的检测 | 第28页 |
·行为学检测 | 第28-29页 |
·脑萎缩的检测 | 第29页 |
·脑内 IL-1β含量的检测 | 第29页 |
·髓过氧化物酶的检测 | 第29-30页 |
·Western Blot 检测 | 第30页 |
·免疫组化染色 | 第30-31页 |
·统计学分析 | 第31页 |
结果 | 第31-38页 |
·凝血酶引起的神经元变性及 DNA 单链损伤在 KO 小鼠中减轻 | 第31-32页 |
·凝血酶引起的脑水肿及神经功能缺失在 KO 小鼠中减轻 | 第32-33页 |
·凝血酶引起的脑萎缩在 KO 小鼠中明显减轻 | 第33-34页 |
·凝血酶引起的炎症反应在 KO 小鼠中明显减低 | 第34-38页 |
讨论 | 第38-41页 |
·动物模型的评价 | 第38页 |
·凝血酶引起的神经损伤 | 第38-41页 |
结论 | 第41-42页 |
第3章 蛋白酶激活受体-1 在凝血酶引起出血性转化中的作用 | 第42-56页 |
引言 | 第42页 |
材料与方法 | 第42-46页 |
·主要实验仪器及试剂 | 第42-43页 |
·实验动物 | 第43页 |
·动物模型的建立 | 第43页 |
·实验分组 | 第43-44页 |
·核磁共振成像 | 第44页 |
·H&E 染色 | 第44页 |
·脑内血红蛋白的检测 | 第44-45页 |
·Perls’染色 | 第45页 |
·Western Blot 检测 | 第45页 |
·免疫组化染色 | 第45-46页 |
·统计学分析 | 第46页 |
结果 | 第46-53页 |
·凝血酶引起的神经损伤及出血性转化在 KO 小鼠中减轻 | 第46-47页 |
·凝血酶引起的血脑屏障破坏在 KO 小鼠中减轻 | 第47-48页 |
·凝血酶引起的出血及铁的沉积在 KO 小鼠中减轻 | 第48-49页 |
·凝血酶引起的血红素加氧酶-1 高表达在 KO 小鼠中减弱 | 第49-51页 |
·凝血酶引起的铁蛋白高表达在 KO 小鼠中减弱 | 第51-53页 |
讨论 | 第53-55页 |
·凝血酶可引起出血性转化 | 第53页 |
·凝血酶可引起血脑屏障的破坏 | 第53-54页 |
·凝血酶可引起血红蛋白裂解及铁的沉积 | 第54页 |
·凝血酶可引起血红素加氧酶-1 表达升高 | 第54页 |
·凝血酶可引起铁蛋白的表达升高 | 第54-55页 |
结论 | 第55-56页 |
第4章 去铁敏治疗可减轻凝血酶引起的出血性转化 | 第56-64页 |
引言 | 第56页 |
材料与方法 | 第56-59页 |
·主要实验仪器及试剂 | 第56-57页 |
·实验动物 | 第57页 |
·动物模型的建立 | 第57页 |
·实验分组 | 第57页 |
·核磁共振成像 | 第57-58页 |
·脑内血红蛋白的检测 | 第58页 |
·Western Blot 检测 | 第58页 |
·水含量的检测 | 第58页 |
·统计学分析 | 第58-59页 |
结果 | 第59-62页 |
·去铁敏可降低 T2*像上的损伤体积 | 第59-60页 |
·去铁敏可降低脑内血红蛋白含量 | 第60页 |
·去铁敏可减少白蛋白的漏出 | 第60-61页 |
·去铁敏对脑水肿的作用 | 第61-62页 |
讨论 | 第62-63页 |
结论 | 第63-64页 |
全文结论 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-76页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第76-77页 |
致谢 | 第77页 |