| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第10-22页 |
| 1．1 绵羊高繁殖力性状研究进展 | 第11-16页 |
| 1．1．1 高繁殖力绵羊品种 | 第11-14页 |
| 1．1．2 影响绵羊高繁殖力的因素 | 第14页 |
| 1．1．3 控制绵羊高繁殖力遗传学因素 | 第14-16页 |
| 1．2 控制绵羊高繁殖力的基因 | 第16-19页 |
| 1．2．1 BMP15基因 | 第16页 |
| 1．2．2 Woodlands基因 | 第16-17页 |
| 1．2．3 Thoka基因 | 第17页 |
| 1．2．4 FecB基因 | 第17-19页 |
| 1．3 BMPR-ⅠB基因 | 第19-21页 |
| 1．3．1 BMPs与BMP受体 | 第19页 |
| 1．3．2 BMPR-ⅠB基因的发现及其在繁殖中的作用 | 第19-20页 |
| 1．3．3 BMPR-ⅠB基因的作用机制 | 第20-21页 |
| 1．4 本实验的目标和意义 | 第21-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-36页 |
| 2．1 实验材料及其仪器、试剂 | 第22-26页 |
| 2．1．1 实验样品的来源及采样方法 | 第22页 |
| 2．1．2 主要仪器设备 | 第22-23页 |
| 2．1．3 主要试剂 | 第23页 |
| 2．1．4 主要药品及试剂的配制 | 第23-25页 |
| 2．1．5 PCR扩增所用的引物 | 第25-26页 |
| 2．2 实验方法 | 第26-34页 |
| 2．2．1 DNA的提取 | 第26-27页 |
| 2．2．2 DNA的模板检测 | 第27-28页 |
| 2．2．3 PCR扩增与检测 | 第28-29页 |
| 2．2．4 非变性聚丙烯酞胺凝胶电泳 | 第29-31页 |
| 2．2．5 PCR产物的回收及克隆测序 | 第31-34页 |
| 2．3 统计分析方法 | 第34-36页 |
| 3 结果与分析 | 第36-45页 |
| 3．1 不同品种绵羊基因组的提取 | 第36页 |
| 3．2 BMPR-ⅠB Q249R突变的检测方法 | 第36-40页 |
| 3．2．1 BMPR-ⅠB基因目的片段的PCR扩增 | 第37页 |
| 3．2．2 BMPR-ⅠB Q249R突变的PCR-SSCP检测 | 第37-38页 |
| 3．2．3 PCR扩增片段的克隆与酶切鉴定 | 第38-39页 |
| 3．2．4 BMPR-Ⅰ基因目的片段测序 | 第39-40页 |
| 3．3 BMPR-ⅠB Q249R突变在不同品种绵羊中的分布 | 第40-42页 |
| 3．4 BMPR-ⅠB Q249R突变对小尾寒羊产羔数效应的分析 | 第42-43页 |
| 3．5 微卫星标记OARJL36的分析 | 第43-45页 |
| 3．5．1 OARJL36标记的PCR扩增 | 第43页 |
| 3．5．2 OARJL36标记的多态性分析 | 第43-45页 |
| 4 讨论 | 第45-49页 |
| 4．1 关于BMPR-Ⅰ B Q249R突变的检测方法 | 第45页 |
| 4．2 不同品种绵羊群体中BMPR-ⅠB Q249R突变的分布 | 第45-46页 |
| 4．3 BMPR-ⅠB Q249R突变对绵羊产羔数的效应 | 第46-47页 |
| 4．4 我国绵羊的BMPR-ⅠB Q249R突变的来源 | 第47页 |
| 4．5 分子遗传标记技术的应用 | 第47-49页 |
| 5 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-59页 |
| 附录 | 第59-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 发表论文 | 第62页 |
