中文摘要 | 第1-7页 |
英文摘要 | 第7-15页 |
英文缩写中文对照 | 第15-17页 |
第一篇 文献综述 | 第17-54页 |
第一章 一氧化氮的功能及其作用机制 | 第17-26页 |
1 NO的理化和生物学特性 | 第17-18页 |
2 NO的生物学功能 | 第18-21页 |
·在心血管系统中的作用 | 第18页 |
·在神经系统中的作用 | 第18-19页 |
·在呼吸系统中的作用 | 第19-20页 |
·在免疫系统中的作用 | 第20页 |
·在消化系统中的作用 | 第20页 |
·在生殖系统中的作用 | 第20-21页 |
3 NO功能的双重性 | 第21页 |
4 NOS的类型和分布 | 第21-23页 |
5 NO的作用机制 | 第23-24页 |
6 研究NO的常用药物 | 第24-26页 |
第二章 维生素C和E的抗自由基作用与哺乳动物生殖的关系 | 第26-34页 |
1 维生素C | 第26-29页 |
·发现和命名 | 第26-27页 |
·物理特性,吸收和排泄 | 第27页 |
·在哺乳动物生殖中的作用 | 第27-29页 |
·毒副作用 | 第29页 |
2 维生素E | 第29-32页 |
·发现和命名 | 第29-30页 |
·物理特性,吸收和排泄 | 第30页 |
·在哺乳动物生殖中的作用 | 第30-32页 |
·毒副作用 | 第32页 |
3 存在问题 | 第32-34页 |
第三章 生长因子与哺乳动物卵泡及卵母细胞发育 | 第34-41页 |
1 胰岛素样生长因子 | 第34-35页 |
2 表皮生长因子 | 第35页 |
3 成纤维细胞生长因子 | 第35-36页 |
4 转化生长因子 | 第36-37页 |
·TGF-β | 第36页 |
·GDF-9,BMP-15和BMP-6 | 第36-37页 |
·抗缪勒氏管激素 | 第37页 |
·活化素 | 第37页 |
5 白细胞介素 | 第37-38页 |
6 干细胞因子受体(C-Kit)和c-Kit配体 | 第38页 |
7 血小板活化因子 | 第38页 |
8 干扰素 | 第38-39页 |
9 其他内源或外源因子 | 第39-41页 |
·pRb和WT1 | 第39页 |
·输卵管素 | 第39-41页 |
第四章 卵泡的分离和体外培养 | 第41-47页 |
1 卵泡的分离方法 | 第43-44页 |
2 影响猪卵泡体外培养的主要因素 | 第44-45页 |
·培养基的选择 | 第44页 |
·促性腺激素的作用 | 第44页 |
·血清的作用 | 第44-45页 |
·生长因子的作用 | 第45页 |
3 猪卵泡研究存在的主要问题 | 第45-46页 |
·研究工作匮乏 | 第45页 |
·分离困难,收获率低 | 第45页 |
·培养困难 | 第45-46页 |
4 研究前景展望 | 第46-47页 |
第五章 一氧化氮与MAPK信号转导途径的调节关系 | 第47-54页 |
1 MAPK | 第47-49页 |
·MAPK的命名 | 第47页 |
·MAPK家族 | 第47-48页 |
·MAPK的分布和运转 | 第48页 |
·MAPK的功能 | 第48-49页 |
2 NOS/NO/cGMP/PKG通路与MAPK信号转导途径的关系 | 第49-53页 |
·同一生理病理过程中NO和MAPK的变化 | 第50页 |
·NO对MAPK信号转导途径的调节 | 第50-51页 |
·MAPK对NO信号通路的调节 | 第51-53页 |
3 存在问题和前景展望 | 第53-54页 |
第二篇 研究论文 | 第54-117页 |
第六章 NO在猪卵母细胞减数分裂成熟过程中的作用 | 第54-67页 |
1 引言 | 第54-55页 |
2 材料与方法 | 第55-60页 |
·药品和试剂 | 第55页 |
·卵母细胞采集 | 第55页 |
·卵泡液的制备 | 第55-56页 |
·卵母细胞的体外培养 | 第56页 |
·卵丘扩展的评判和分级 | 第56-57页 |
·卵母细胞核相检查 | 第57-59页 |
·卵丘细胞DNA片段化检测 | 第59页 |
·实验设计 | 第59页 |
·统计分析 | 第59-60页 |
3 结果 | 第60-64页 |
·SNP对猪卵丘细胞扩展和DNA片段化的影响 | 第60-61页 |
·SNP对猪CEOs减数分裂成熟和存活力的影响 | 第61-62页 |
·SNP对猪DOs减数分裂成熟和存活力的影响 | 第62-63页 |
·SNP对猪CEOs和DOs减数分裂成熟作用的差异 | 第63-64页 |
4 讨论 | 第64-67页 |
第七章 不同培养条件下NO对猪卵母细胞减数分裂的影响 | 第67-76页 |
1 引言 | 第67-68页 |
2 材料与方法 | 第68-69页 |
·猪卵母细胞的采集 | 第68页 |
·卵母细胞的体外成熟 | 第68页 |
·卵丘扩展的评判和分级 | 第68页 |
·卵母细胞的形态学观察和核相检测 | 第68-69页 |
·实验设计 | 第69页 |
·统计分析 | 第69页 |
3 实验结果 | 第69-73页 |
·SNP对卵丘扩展的影响 | 第69-70页 |
·SNP和β-ME对透明带脆性的影响 | 第70-71页 |
·SNP和β-ME对减数分裂成熟的影响 | 第71-72页 |
·SNP和β-ME对猪卵母细胞发育到MⅡ期的影响 | 第72-73页 |
4 讨论 | 第73-76页 |
第八章 猪卵母细胞减数分裂中维生素C和E的抗自由基作用 | 第76-83页 |
1 引言 | 第76-77页 |
2 材料与方法 | 第77-78页 |
·药品试剂 | 第77页 |
·卵母细胞采集 | 第77页 |
·卵母细胞的体外成熟 | 第77-78页 |
·卵丘扩展的评判和分级 | 第78页 |
·核相检查 | 第78页 |
·卵丘细胞 DNA 片段化检测 | 第78页 |
·实验设计 | 第78页 |
·统计分析 | 第78页 |
3 结果 | 第78-80页 |
·维生素E和维生素C对卵丘扩展的影响 | 第78页 |
·维生素E和维生素C对卵丘细胞DNA片段化的影响 | 第78-79页 |
·维生素E对卵母细胞减数分裂成熟和存活力的影响 | 第79-80页 |
·维生素C对卵母细胞减数分裂成熟和存活力的影响 | 第80页 |
4 讨论 | 第80-83页 |
第九章 iNOS和eNOS活性与猪卵母细胞减数分裂成熟 | 第83-91页 |
1 引言 | 第83-84页 |
2 材料与方法 | 第84-85页 |
·约品和试剂 | 第84页 |
·卵母细胞采集 | 第84页 |
·卵母细胞的体外培养 | 第84页 |
·卵丘扩展的评判和分级 | 第84页 |
·卵丘细胞DNA片段化检测 | 第84页 |
·卵母细胞核相检查 | 第84页 |
·实验设计 | 第84-85页 |
·统计分析 | 第85页 |
3 结果 | 第85-88页 |
·三种抑制剂对卵丘细胞扩展和DNA片段化的影响 | 第85-86页 |
·AG对CEOs利DOs减数分裂成熟和退化的影响 | 第86页 |
·L-NNA对CEOs和DOs减数分裂成熟和退化的影响 | 第86-87页 |
·L-NAME对CEOs和DOs减数分裂成熟和退化的影响 | 第87-88页 |
4 讨论 | 第88-91页 |
第十章 猪卵巢NOS表达及与卵泡成腔的关系 | 第91-106页 |
1 引言 | 第91-92页 |
2 材料与方法 | 第92-95页 |
·腔前卵泡的分离和选择 | 第92-93页 |
·卵泡培养 | 第93页 |
·卵母细胞的采集和培养 | 第93页 |
·抗体 | 第93页 |
·卵母细胞和卵巢组织收集 | 第93-94页 |
·免疫组化染色 | 第94-95页 |
·实验设计 | 第95页 |
·统计分析 | 第95页 |
3 结果 | 第95-104页 |
·SNP对卵泡腔形成的影响 | 第95-96页 |
·SNP,AG和L-NAME对减数分裂成熟的影响 | 第96-97页 |
·eNOS在COCs、卵泡、黄体和白体中的表达 | 第97-100页 |
·iNoS在COCs、卵泡、黄体和白体中的表达 | 第100-104页 |
4 讨论 | 第104-106页 |
第十一章 iNOS在猪黄体中的表达及其与黄体发育退化的关系 | 第106-116页 |
1 引言 | 第106-107页 |
2 材料与方法 | 第107-109页 |
·卵巢组织采集 | 第107页 |
·iNOS免疫组化定位检测 | 第107-108页 |
·黄体细胞收集和DNA片段化检测 | 第108-109页 |
·统计学分析 | 第109页 |
3 结果 | 第109-114页 |
·iNOS的免疫组化定位 | 第109-112页 |
·黄体细胞DNA片段化检测 | 第112-114页 |
4 讨论 | 第114-116页 |
第十二章 结论 | 第116-117页 |
参考文献 | 第117-145页 |
致谢 | 第145-148页 |
个人简介 | 第148-149页 |
博士期间已发表和待发表的论文 | 第149-151页 |
附录 | 第151-153页 |