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一氧化氮与猪卵母细胞减数分裂成熟

中文摘要第1-7页
英文摘要第7-15页
英文缩写中文对照第15-17页
第一篇 文献综述第17-54页
 第一章 一氧化氮的功能及其作用机制第17-26页
  1 NO的理化和生物学特性第17-18页
  2 NO的生物学功能第18-21页
   ·在心血管系统中的作用第18页
   ·在神经系统中的作用第18-19页
   ·在呼吸系统中的作用第19-20页
   ·在免疫系统中的作用第20页
   ·在消化系统中的作用第20页
   ·在生殖系统中的作用第20-21页
  3 NO功能的双重性第21页
  4 NOS的类型和分布第21-23页
  5 NO的作用机制第23-24页
  6 研究NO的常用药物第24-26页
 第二章 维生素C和E的抗自由基作用与哺乳动物生殖的关系第26-34页
  1 维生素C第26-29页
   ·发现和命名第26-27页
   ·物理特性,吸收和排泄第27页
   ·在哺乳动物生殖中的作用第27-29页
   ·毒副作用第29页
  2 维生素E第29-32页
   ·发现和命名第29-30页
   ·物理特性,吸收和排泄第30页
   ·在哺乳动物生殖中的作用第30-32页
   ·毒副作用第32页
  3 存在问题第32-34页
 第三章 生长因子与哺乳动物卵泡及卵母细胞发育第34-41页
  1 胰岛素样生长因子第34-35页
  2 表皮生长因子第35页
  3 成纤维细胞生长因子第35-36页
  4 转化生长因子第36-37页
   ·TGF-β第36页
   ·GDF-9,BMP-15和BMP-6第36-37页
   ·抗缪勒氏管激素第37页
   ·活化素第37页
  5 白细胞介素第37-38页
  6 干细胞因子受体(C-Kit)和c-Kit配体第38页
  7 血小板活化因子第38页
  8 干扰素第38-39页
  9 其他内源或外源因子第39-41页
   ·pRb和WT1第39页
   ·输卵管素第39-41页
 第四章 卵泡的分离和体外培养第41-47页
  1 卵泡的分离方法第43-44页
  2 影响猪卵泡体外培养的主要因素第44-45页
   ·培养基的选择第44页
   ·促性腺激素的作用第44页
   ·血清的作用第44-45页
   ·生长因子的作用第45页
  3 猪卵泡研究存在的主要问题第45-46页
   ·研究工作匮乏第45页
   ·分离困难,收获率低第45页
   ·培养困难第45-46页
  4 研究前景展望第46-47页
 第五章 一氧化氮与MAPK信号转导途径的调节关系第47-54页
  1 MAPK第47-49页
   ·MAPK的命名第47页
   ·MAPK家族第47-48页
   ·MAPK的分布和运转第48页
   ·MAPK的功能第48-49页
  2 NOS/NO/cGMP/PKG通路与MAPK信号转导途径的关系第49-53页
   ·同一生理病理过程中NO和MAPK的变化第50页
   ·NO对MAPK信号转导途径的调节第50-51页
   ·MAPK对NO信号通路的调节第51-53页
  3 存在问题和前景展望第53-54页
第二篇 研究论文第54-117页
 第六章 NO在猪卵母细胞减数分裂成熟过程中的作用第54-67页
  1 引言第54-55页
  2 材料与方法第55-60页
   ·药品和试剂第55页
   ·卵母细胞采集第55页
   ·卵泡液的制备第55-56页
   ·卵母细胞的体外培养第56页
   ·卵丘扩展的评判和分级第56-57页
   ·卵母细胞核相检查第57-59页
   ·卵丘细胞DNA片段化检测第59页
   ·实验设计第59页
   ·统计分析第59-60页
  3 结果第60-64页
   ·SNP对猪卵丘细胞扩展和DNA片段化的影响第60-61页
   ·SNP对猪CEOs减数分裂成熟和存活力的影响第61-62页
   ·SNP对猪DOs减数分裂成熟和存活力的影响第62-63页
   ·SNP对猪CEOs和DOs减数分裂成熟作用的差异第63-64页
  4 讨论第64-67页
 第七章 不同培养条件下NO对猪卵母细胞减数分裂的影响第67-76页
  1 引言第67-68页
  2 材料与方法第68-69页
   ·猪卵母细胞的采集第68页
   ·卵母细胞的体外成熟第68页
   ·卵丘扩展的评判和分级第68页
   ·卵母细胞的形态学观察和核相检测第68-69页
   ·实验设计第69页
   ·统计分析第69页
  3 实验结果第69-73页
   ·SNP对卵丘扩展的影响第69-70页
   ·SNP和β-ME对透明带脆性的影响第70-71页
   ·SNP和β-ME对减数分裂成熟的影响第71-72页
   ·SNP和β-ME对猪卵母细胞发育到MⅡ期的影响第72-73页
  4 讨论第73-76页
 第八章 猪卵母细胞减数分裂中维生素C和E的抗自由基作用第76-83页
  1 引言第76-77页
  2 材料与方法第77-78页
   ·药品试剂第77页
   ·卵母细胞采集第77页
   ·卵母细胞的体外成熟第77-78页
   ·卵丘扩展的评判和分级第78页
   ·核相检查第78页
   ·卵丘细胞 DNA 片段化检测第78页
   ·实验设计第78页
   ·统计分析第78页
  3 结果第78-80页
   ·维生素E和维生素C对卵丘扩展的影响第78页
   ·维生素E和维生素C对卵丘细胞DNA片段化的影响第78-79页
   ·维生素E对卵母细胞减数分裂成熟和存活力的影响第79-80页
   ·维生素C对卵母细胞减数分裂成熟和存活力的影响第80页
  4 讨论第80-83页
 第九章 iNOS和eNOS活性与猪卵母细胞减数分裂成熟第83-91页
  1 引言第83-84页
  2 材料与方法第84-85页
   ·约品和试剂第84页
   ·卵母细胞采集第84页
   ·卵母细胞的体外培养第84页
   ·卵丘扩展的评判和分级第84页
   ·卵丘细胞DNA片段化检测第84页
   ·卵母细胞核相检查第84页
   ·实验设计第84-85页
   ·统计分析第85页
  3 结果第85-88页
   ·三种抑制剂对卵丘细胞扩展和DNA片段化的影响第85-86页
   ·AG对CEOs利DOs减数分裂成熟和退化的影响第86页
   ·L-NNA对CEOs和DOs减数分裂成熟和退化的影响第86-87页
   ·L-NAME对CEOs和DOs减数分裂成熟和退化的影响第87-88页
  4 讨论第88-91页
 第十章 猪卵巢NOS表达及与卵泡成腔的关系第91-106页
  1 引言第91-92页
  2 材料与方法第92-95页
   ·腔前卵泡的分离和选择第92-93页
   ·卵泡培养第93页
   ·卵母细胞的采集和培养第93页
   ·抗体第93页
   ·卵母细胞和卵巢组织收集第93-94页
   ·免疫组化染色第94-95页
   ·实验设计第95页
   ·统计分析第95页
  3 结果第95-104页
   ·SNP对卵泡腔形成的影响第95-96页
   ·SNP,AG和L-NAME对减数分裂成熟的影响第96-97页
   ·eNOS在COCs、卵泡、黄体和白体中的表达第97-100页
   ·iNoS在COCs、卵泡、黄体和白体中的表达第100-104页
  4 讨论第104-106页
 第十一章 iNOS在猪黄体中的表达及其与黄体发育退化的关系第106-116页
  1 引言第106-107页
  2 材料与方法第107-109页
   ·卵巢组织采集第107页
   ·iNOS免疫组化定位检测第107-108页
   ·黄体细胞收集和DNA片段化检测第108-109页
   ·统计学分析第109页
  3 结果第109-114页
   ·iNOS的免疫组化定位第109-112页
   ·黄体细胞DNA片段化检测第112-114页
  4 讨论第114-116页
 第十二章 结论第116-117页
参考文献第117-145页
致谢第145-148页
个人简介第148-149页
博士期间已发表和待发表的论文第149-151页
附录第151-153页

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