| 主要英文缩略词表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 文献综述 | 第13-35页 |
| 1 光诱导胁迫蛋白(ELIPs)研究进展 | 第13-25页 |
| ·引言 | 第13-14页 |
| ·ELIP亚家族:原核和真核生物的ELIP-like蛋白 | 第14-17页 |
| ·ELIP表达的调控 | 第17-21页 |
| ·光受体 | 第17页 |
| ·转录调节 | 第17-19页 |
| ·光强和光质调节ELIP的表达 | 第18页 |
| ·温度调节ELIP表达 | 第18页 |
| ·发育调节ELIP表达 | 第18页 |
| ·植物激素调节ELIP表达 | 第18-19页 |
| ·细胞核和细胞质因子参与ELIP表达 | 第19页 |
| ·翻译后调节 | 第19-21页 |
| ·ELIP整合到类囊体膜上 | 第19页 |
| ·ELIPs在光胁迫条件下的稳定 | 第19-20页 |
| ·光恢复过程中ELIPs的降解 | 第20-21页 |
| ·ELIPs的功能:“色素载体”蛋白 | 第21-25页 |
| ·ELIPs:临时的叶绿素结合蛋白 | 第22-24页 |
| ·ELIPs在增加的色素蛋白转换中的积累 | 第24页 |
| ·ELIPs在蛋白体复合物装配和去装配区域中的定位 | 第24页 |
| ·ELIPs在叶黄素循环中的作用 | 第24-25页 |
| 2 苜蓿组织培养研究进展 | 第25-29页 |
| ·苜蓿组织培养中选用的外植体 | 第26页 |
| ·苜蓿组织培养中培养基的选择 | 第26-27页 |
| ·苜蓿组织培养途径 | 第27-28页 |
| ·直接分化再生途径 | 第27页 |
| ·愈伤组织再生途径 | 第27页 |
| ·原生质体再生途径 | 第27-28页 |
| ·胚状体再生途径 | 第28页 |
| ·细胞生长调节物质的应用 | 第28-29页 |
| ·培养条件的控制 | 第29页 |
| ·光照 | 第29页 |
| ·温度 | 第29页 |
| 3 苜蓿基因工程的研究现状 | 第29-35页 |
| ·前言 | 第29-30页 |
| ·紫花苜蓿的转基因研究 | 第30-34页 |
| ·非生物胁迫的耐受性 | 第30-31页 |
| ·生物胁迫的耐受性 | 第31-32页 |
| ·对除草剂的抗性 | 第32页 |
| ·改良牧草质量 | 第32-33页 |
| ·新型化合物的生产 | 第33-34页 |
| ·苜蓿基因工程的局限性 | 第34-35页 |
| 第一章 苜蓿的组织培养 | 第35-42页 |
| 1 材料与方法 | 第35-37页 |
| ·实验材料 | 第35-36页 |
| ·植物材料 | 第35页 |
| ·基本培养基 | 第35-36页 |
| ·植物激素 | 第36页 |
| ·方法 | 第36-37页 |
| ·种子灭菌及无菌苗的获得 | 第36-37页 |
| ·培养基的筛选 | 第37页 |
| ·外植体的选择 | 第37页 |
| ·苜蓿再生苗的扩繁 | 第37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-40页 |
| ·培养基的筛选 | 第37-38页 |
| ·外植体的选择 | 第38-39页 |
| ·再生植株的扩繁 | 第39-40页 |
| 3 讨论 | 第40-41页 |
| ·苜蓿种子灭菌及无菌苗的培养 | 第40页 |
| ·苜蓿愈伤组织的形成分化 | 第40-41页 |
| 4 小结 | 第41-42页 |
| 第二章 农杆菌介导的Dscbr基因转化苜蓿的体系优化 | 第42-56页 |
| 1 材料与方法 | 第42-47页 |
| ·实验材料 | 第42-44页 |
| ·植物材料 | 第42页 |
| ·基本培养基 | 第42页 |
| ·植物培养基 | 第42页 |
| ·农杆菌培养基 | 第42页 |
| ·试剂 | 第42-43页 |
| ·菌株和质粒 | 第43-44页 |
| ·方法 | 第44-47页 |
| ·卡那霉素选择压的比较 | 第44页 |
| ·愈伤诱导过程中选择压力的比较 | 第44页 |
| ·生根过程中选择压力的比较 | 第44页 |
| ·Dscbr基因转化根癌农杆菌 | 第44-46页 |
| ·碱裂解法制备小量质粒DNA | 第44页 |
| ·根癌农杆菌感受态细胞的制备 | 第44-45页 |
| ·冻融法转化感受态的根癌农杆菌 | 第45页 |
| ·转化子的检测 | 第45-46页 |
| ·农杆菌介导的苜蓿遗传转化方法 | 第46-47页 |
| ·菌液的制备 | 第46页 |
| ·剪叶预培养 | 第46页 |
| ·侵染 | 第46页 |
| ·洗叶 | 第46页 |
| ·再生植株的获得 | 第46页 |
| ·再生植株的移栽 | 第46-47页 |
| ·GUS组织化学染色分析 | 第47页 |
| ·转化条件的优化分析 | 第47页 |
| ·叶片预培养对转化的影响 | 第47页 |
| ·侵染时间对转化的影响 | 第47页 |
| ·共培养时间对转化的影响 | 第47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-53页 |
| ·选择压力的确定 | 第47-48页 |
| ·愈伤诱导过程中选择压力的确定 | 第47-48页 |
| ·生根过程中选择压力的确定 | 第48页 |
| ·Dscbr基因转化根癌农杆菌 | 第48-49页 |
| ·苜蓿转化系统的优化 | 第49-52页 |
| ·叶片预培养对转化效率的影响 | 第49-50页 |
| ·侵染时间对转化效率的影响 | 第50页 |
| ·共培养时间及方法对转化效率的影响 | 第50-52页 |
| ·Dscbr基因的导入与植株再生 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-54页 |
| ·农杆菌菌株对转化的影响 | 第53页 |
| ·农杆菌与外植体共培养 | 第53-54页 |
| ·共培养方法 | 第53页 |
| ·最佳共培养时间 | 第53-54页 |
| ·转化细胞的选择 | 第54页 |
| 4 小结 | 第54-56页 |
| 第三章 转盐生杜氏藻Dscbr基因苜蓿的分子生物学鉴定 | 第56-62页 |
| 1 材料与方法 | 第56-58页 |
| ·材料 | 第56页 |
| ·方法 | 第56-58页 |
| ·DNA的提取 | 第56页 |
| ·RNA的提取 | 第56-57页 |
| ·转基因苜蓿的PCR检测 | 第57页 |
| ·转基因苜蓿的RT-PCR检测 | 第57-58页 |
| 2 结果 | 第58-59页 |
| ·转基因苜蓿的PCR检测 | 第58-59页 |
| ·转基因苜蓿的RT-PCR检测 | 第59页 |
| ·总RNA电泳检测 | 第59页 |
| ·RT-PCR检测 | 第59页 |
| 3 讨论 | 第59-61页 |
| ·PCR检测 | 第59-60页 |
| ·苜蓿RNA的提取 | 第60页 |
| ·RT-PCR检测 | 第60-61页 |
| 4 小结 | 第61-62页 |
| 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 附图 | 第76-78页 |
