| 缩略词表 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 前言 | 第8-9页 |
| 实验研究 | 第9-42页 |
| 1 大鼠视网膜神经节细胞（RGC_s）混合培养模型的建立 | 第9-15页 |
| 1．1 实验材料 | 第9-11页 |
| 1．1．1 实验动物 | 第9-10页 |
| 1．1．2 主要仪器 | 第10页 |
| 1．1．3 药品和试剂配制 | 第10-11页 |
| 1．2 实验方法 | 第11-12页 |
| 1．2．1 培养皿的处理 | 第11页 |
| 1．2．2 大鼠视网膜神经细胞悬液的制备 | 第11页 |
| 1．2．3 细胞的接种培养 | 第11-12页 |
| 1．2．4 细胞的形态学观察 | 第12页 |
| 1．2．5 大鼠RGC_s的鉴定 | 第12页 |
| 1．3 实验结果 | 第12-13页 |
| 1．3．1 形态学观察 | 第12-13页 |
| 1．3．2 免疫细胞化学检查 | 第13页 |
| 1．4 讨论 | 第13-15页 |
| 1．4．1 RGC_s体外培养的取材 | 第13页 |
| 1．4．2 培养板、皿的处理 | 第13页 |
| 1．4．3 培养基及其成分的选用 | 第13-14页 |
| 1．4．4 大鼠视网膜神经节细胞的混合培养及纯化 | 第14-15页 |
| 2 天然、人工麝香针剂及溶媒对体外培养大鼠视网膜神经细胞的毒性试验 | 第15-22页 |
| 2．1 天然麝香针剂及溶媒对体外培养大鼠视网膜神经细胞的毒性试验 | 第15-18页 |
| 2．1．1 实验材料 | 第15页 |
| 2．1．2 实验方法 | 第15-16页 |
| 2．1．3 统计方法 | 第16-17页 |
| 2．1．4 结果 | 第17-18页 |
| 2．2 人工麝香针剂及溶媒对体外培养大鼠视网膜神经细胞的毒性试验 | 第18-21页 |
| 2．2．1 实验材料 | 第18页 |
| 2．2．2 实验方法 | 第18-19页 |
| 2．2．3 统计方法 | 第19页 |
| 2．2．4 结果 | 第19-21页 |
| 2．3 讨论 | 第21-22页 |
| 2．3．1 通过药物细胞毒性试验精确测算药物对细胞的最大无毒浓度（TC_o） | 第21-22页 |
| 2．3．2 通过药物细胞毒性试验确定药物溶媒对细胞有无毒性 | 第22页 |
| 2．3．3 通过药物细胞毒性试验指导细胞药理实验的浓度组设计 | 第22页 |
| 2．3．4 MTT自动比色法反映细胞存活的机制 | 第22页 |
| 3 天然、人工麝香对体外培养大鼠视网膜神经细胞的影响 | 第22-42页 |
| 3．1 天然麝香对体外培养大鼠视网膜神经细胞的影响 | 第23-30页 |
| 3．1．1 实验材料 | 第23页 |
| 3．1．2 实验方法 | 第23-24页 |
| 3．1．3 统计方法 | 第24页 |
| 3．1．4 结果 | 第24-30页 |
| 3．2 人工麝香对体外培养大鼠视网膜神经细胞的影响 | 第30-36页 |
| 3．2．1 实验材料 | 第30页 |
| 3．2．2 实验方法 | 第30-31页 |
| 3．2．3 统计方法 | 第31页 |
| 3．2．4 结果 | 第31-36页 |
| 3．3 讨论 | 第36-42页 |
| 3．3．1 视神经疾病的中医病名、病机和治法探讨 | 第36-38页 |
| 3．3．2 开通目窍，首推麝香 | 第38-39页 |
| 3．3．3 神经药理学对麝香开窍功效的已有认识及不足 | 第39页 |
| 3．3．4 麝香协同神经生长因子（NGF）增进大鼠视网膜神经细胞存活的机理探讨 | 第39-42页 |
| 3．3．5 麝香增强神经生长因子（NGF）生物效应有效成分的探讨 | 第42页 |
| 小结 | 第42-43页 |
| 问题与展望 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 附1 【综述】视网膜神经节细胞培养的新进展 | 第48-54页 |
| 附2 图片 | 第54-58页 |
