| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-22页 |
| ·选题背景 | 第11-12页 |
| ·NIDDM 发病机理的研究进展 | 第12-15页 |
| ·氧化应激作用 | 第12-14页 |
| ·MafA/PDX-1 信号通路 | 第14页 |
| ·PDX-1 和 MafA 的生物学特征 | 第14页 |
| ·PPARγ对糖尿病的影响 | 第14-15页 |
| ·NIDDM 的药物治疗 | 第15-20页 |
| ·西医抗糖尿病药物 | 第15-19页 |
| ·中医中药抗糖尿病 | 第19-20页 |
| ·问题与展望 | 第20页 |
| ·本文的主要研究内容和意义 | 第20-22页 |
| 第二章 红薯叶黄酮的提取和鉴定 | 第22-27页 |
| ·材料 | 第22-23页 |
| ·试剂 | 第23页 |
| ·试验主要仪器 | 第23页 |
| ·红薯叶黄酮提取方法 | 第23-25页 |
| ·红薯叶粗黄酮的提取 | 第23-24页 |
| ·红薯叶粗制黄酮的纯化 | 第24页 |
| ·红薯叶黄酮的鉴定 | 第24页 |
| ·黄酮含量测定 | 第24-25页 |
| ·结果 | 第25-26页 |
| ·红薯叶黄酮的鉴定 | 第25页 |
| ·红薯叶黄酮的含量 | 第25-26页 |
| ·本章小结 | 第26-27页 |
| 第三章 红薯叶黄酮对 NIDDM 小鼠降糖作用的研究 | 第27-36页 |
| ·材料 | 第27-28页 |
| ·药品和试剂 | 第27-28页 |
| ·主要试验器材 | 第28页 |
| ·试验动物 | 第28页 |
| ·方法 | 第28-30页 |
| ·NIDDM 小鼠动物模型的建立与评价 | 第28-29页 |
| ·模型的诊断标准 | 第29页 |
| ·血糖血脂测定 | 第29页 |
| ·动物一般情况观察 | 第29页 |
| ·样品的采集 | 第29-30页 |
| ·数据处理 | 第30页 |
| ·结果 | 第30-33页 |
| ·NIDDM 小鼠模型建立的判定 | 第30页 |
| ·小鼠一般状态的变化 | 第30页 |
| ·FSP 对 NIDDM 小鼠各项生理指标影响 | 第30-33页 |
| ·讨论 | 第33-35页 |
| ·NIDDM 小鼠模型的建立 | 第33页 |
| ·FSP 对 NIDDM 小鼠生化指标的评价 | 第33-34页 |
| ·FSP 对 NIDDM 小鼠抗氧化能力的评价 | 第34-35页 |
| ·本章小结 | 第35-36页 |
| 第四章 红薯叶黄酮对糖和脂类代谢相关因子的影响 | 第36-50页 |
| ·材料 | 第38-39页 |
| ·试验动物与试剂 | 第38页 |
| ·主要试剂 | 第38页 |
| ·主要仪器设备 | 第38页 |
| ·试剂配制 | 第38-39页 |
| ·方法 | 第39-43页 |
| ·NIDDM 小鼠模型的复制 | 第39页 |
| ·试验动物的分组和处理 | 第39页 |
| ·标本收集 | 第39-40页 |
| ·肝、肾，胰腺组织总蛋白质的提取及含量测定 | 第40页 |
| ·Western blot 免疫印迹法测定 PDX-1 表达 | 第40-42页 |
| ·PPARγ在蛋白表达水平的检测 | 第42-43页 |
| ·数据统计 | 第43页 |
| ·结果 | 第43-47页 |
| ·试验鼠胰腺组织中PDX-1 的表达量 | 第43-44页 |
| ·试验中鼠胰腺组织 MafA 的表达量 | 第44-46页 |
| ·试验鼠肾组织中 PPARγ的表达量 | 第46-47页 |
| ·讨论 | 第47-49页 |
| ·FSP 对NIDDM 小鼠胰腺组织中mafa 表达水平的影响 | 第47页 |
| ·FSP 对NIDDM 小鼠胰腺组织中PDX-1 表达的影响 | 第47-48页 |
| ·FSP 对NIDDM 小鼠肾组织中PPARγ表达的影响 | 第48-49页 |
| ·本章小结 | 第49-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 作者简介 | 第61页 |
