| 致谢 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-11页 |
| Abstract | 第11-17页 |
| 主要缩略词 | 第17-18页 |
| 目次 | 第18-21页 |
| 前言 | 第21-28页 |
| 参考文献 | 第23-28页 |
| 第Ⅰ部分 iNOS/NO通路的激活与RhoA过表达 | 第28-77页 |
| 1 引言 | 第28-29页 |
| 2 实验材料 | 第29-36页 |
| ·主要仪器与设备 | 第29-30页 |
| ·主要试剂与耗材 | 第30-32页 |
| ·试剂配制 | 第32-36页 |
| 3 实验方法 | 第36-57页 |
| ·SMC的原代培养与鉴定 | 第36-40页 |
| ·LPS对SMC活性与增殖能力的影响 | 第40-42页 |
| ·LPS对iNOS/NO通路的激活 | 第42-54页 |
| ·LPS刺激对RhoA蛋白表达的影响 | 第54页 |
| ·iNOS/NO通路的激活与阻断 | 第54-55页 |
| ·统计学分析 | 第55-57页 |
| 4 结果 | 第57-71页 |
| ·SMC的原代培养与鉴定 | 第57-60页 |
| ·LPS对SMC活性与增殖能力的影响 | 第60-61页 |
| ·LPS对iNOS/NO通路的激活 | 第61-65页 |
| ·LPS刺激对RhoA蛋白表达的影响 | 第65-66页 |
| ·iNOS/NO通路的激活与阻断对RhoA蛋白表达的影响 | 第66-71页 |
| 5 讨论 | 第71-74页 |
| 6 参考文献 | 第74-77页 |
| 第Ⅱ部分 乙酰水杨酸对小G蛋白A调控作用的研究 | 第77-111页 |
| 1 引言 | 第77-78页 |
| 2 实验材料 | 第78-79页 |
| ·主要仪器与设备 | 第78页 |
| ·主要试剂与耗材 | 第78页 |
| ·试剂配制 | 第78-79页 |
| 3 实验方法 | 第79-88页 |
| ·乙酰水杨酸对SMC活性的影响 | 第79页 |
| ·乙酰水杨酸对RhoA表达的影响 | 第79-83页 |
| ·乙酸水杨酸对RhoA活性的影响 | 第83-84页 |
| ·乙酰水杨酸对RhoA转膜的影响 | 第84-85页 |
| ·乙酸水杨酸对RhoA蛋白磷酸化水平的影响 | 第85-86页 |
| ·乙酰水杨酸对LPS诱导增殖作用的影响 | 第86-87页 |
| ·统计学分析 | 第87-88页 |
| 4 结果 | 第88-96页 |
| ·乙酰水杨对细胞活性的影响 | 第88页 |
| ·乙酰水杨酸对RhoA表达的影响 | 第88-91页 |
| ·乙酸水杨酸对RhoA活性的影响 | 第91-92页 |
| ·乙酰水杨酸对RhoA转膜的影响 | 第92-93页 |
| ·乙酸水杨酸对RhoA蛋白磷酸化水平的影响 | 第93-94页 |
| ·乙酰水杨酸对LPS诱导增殖作用的影响 | 第94-96页 |
| 5 讨论 | 第96-102页 |
| 6 参考文献 | 第102-111页 |
| 第Ⅲ部分 乙酰水杨酸调控小G蛋白A的机制探讨 | 第111-142页 |
| 1. 引言 | 第111-112页 |
| 2. 实验材料 | 第112-114页 |
| ·主要仪器与设备 | 第112页 |
| ·主要试剂与耗材 | 第112页 |
| ·试剂配制 | 第112-114页 |
| 3 实验方法 | 第114-120页 |
| ·Aspirin对iNOS/NO通路的影响 | 第114-115页 |
| ·sGC/cGMP/PKG通路的参与 | 第115-116页 |
| ·NSAIDs与RhoA的过表达 | 第116-117页 |
| ·RhoA稳定性的改变 | 第117-118页 |
| ·RhoA状态与蛋白降解的关联 | 第118-119页 |
| ·统计学分析 | 第119-120页 |
| 4 结果 | 第120-133页 |
| ·Aspirin对iNOS/NO通路的影响 | 第120-122页 |
| ·sGC/cGMP/PKG通路的参与 | 第122-126页 |
| ·NSAIDs与RhoA的过表达 | 第126-128页 |
| ·RhoA稳定性的改变 | 第128-130页 |
| ·RhoA状态与蛋白降解的关联 | 第130-133页 |
| 5 讨论 | 第133-138页 |
| 6 参考文献 | 第138-142页 |
| 全文主要结论及创新点 | 第142-143页 |
| 综述 | 第143-161页 |
| 参考文献 | 第150-161页 |
| 个人简历及科研成果 | 第161页 |