| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 1 绪论 | 第9-29页 |
| ·花对称性的演化 | 第9-10页 |
| ·花对称性的遗传控制 | 第10-14页 |
| ·TCP结构域基因家族 | 第12-14页 |
| ·豆科植物中花对称性的控制 | 第14-24页 |
| ·LjCYC2基因的结构与功能 | 第14-18页 |
| ·LjCYC2基因参与花对称性的控制 | 第18-19页 |
| ·LjCYC2基因对花发育的调控 | 第19-22页 |
| ·LjCYC2作为"选择基因"对豆科多种花型起源与演化的启示 | 第22-24页 |
| ·荧光蛋白标签技术在植物中的应用 | 第24-26页 |
| ·荧光蛋白简介 | 第24-25页 |
| ·植物细胞中自发荧光对定位结果的影响 | 第25-26页 |
| ·菊花基因工程研究进展 | 第26-27页 |
| ·菊花遗传转化体系建立的重要因素 | 第26-27页 |
| ·实验研究的目的和意义 | 第27-29页 |
| 2 菊花中花对称性基因的克隆 | 第29-41页 |
| ·材料与方法 | 第29-30页 |
| ·植物材料 | 第29页 |
| ·实验试剂 | 第29-30页 |
| ·试验设备 | 第30页 |
| ·研究方法 | 第30-35页 |
| ·PCR反应的引物设计 | 第30-31页 |
| ·‘松江白鹤’RNA提取 | 第31页 |
| ·RT-PCR克隆‘松江白鹤’花对称性基因 | 第31-32页 |
| ·PCR产物的纯化 | 第32-33页 |
| ·目的片段与载体的连接 | 第33页 |
| ·连接产物的转化 | 第33-34页 |
| ·质粒DNA的提取及纯化 | 第34-35页 |
| ·结果与分析 | 第35-40页 |
| ·总RNA的提取 | 第35-36页 |
| ·‘松江白鹤’基因全长克隆 | 第36-40页 |
| ·本章小结 | 第40-41页 |
| 3 花对称性基因LjCYC2对露地菊遗传转化的研究 | 第41-59页 |
| ·材料 | 第41-43页 |
| ·植物材料 | 第41页 |
| ·载体 | 第41-42页 |
| ·基本培养基、试剂及实验设备 | 第42-43页 |
| ·研究方法 | 第43-45页 |
| ·农杆菌转化菌株的鉴定 | 第43页 |
| ·质粒的酶切鉴定 | 第43-45页 |
| ·农杆菌介导的LjCYC2基因露地菊‘火焰’的遗传转化 | 第45-48页 |
| ·植物培养基 | 第45页 |
| ·农杆菌遗传转化体系 | 第45-46页 |
| ·再生体系的优化 | 第46页 |
| ·抗生素敏感性试验 | 第46页 |
| ·转化体系的优化 | 第46-47页 |
| ·转基因株系的检测 | 第47-48页 |
| ·结果与分析 | 第48-57页 |
| ·农杆菌菌株鉴定 | 第48页 |
| ·质粒酶切鉴定 | 第48页 |
| ·质粒PCR鉴定 | 第48-49页 |
| ·再生体系的优化 | 第49-51页 |
| ·转化体系的优化 | 第51-53页 |
| ·转化条件的优化 | 第53-56页 |
| ·LjCYC2基因在露地菊中的遗传转化 | 第56-57页 |
| ·本章小结 | 第57-58页 |
| ·展望 | 第58-59页 |
| 4 讨论 | 第59-62页 |
| ·遗传转化效率 | 第59页 |
| ·延迟筛选时间及选择压(Hyg)的强度对遗传转化的影响 | 第59-60页 |
| ·外植体的预培养 | 第60页 |
| ·外植体的共培养 | 第60页 |
| ·花对称性演化中的几个问题 | 第60-62页 |
| 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 附录 | 第68-69页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
