| 中文摘要 | 第1-15页 |
| 英文摘要 | 第15-23页 |
| 前言 | 第23-36页 |
| 1 蛋白质多肽类药物口服给药系统 | 第23-24页 |
| 2 基因递释系统 | 第24-25页 |
| 3 超多孔水凝胶 | 第25-26页 |
| 4 纳米给药系统 | 第26-27页 |
| 5 功能化壳聚糖衍生物 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-36页 |
| 第一部分 用于改善蛋白质多肽类药物功效的超多孔水凝胶新型给药载体 | 第36-167页 |
| 第一章 SPH-IPN的制备和表征 | 第36-59页 |
| 1 材料与仪器 | 第37-38页 |
| 2 实验方法 | 第38-40页 |
| ·SPH-IPN的制备 | 第38页 |
| ·IPN结构表征 | 第38-39页 |
| ·SPH-IPN形态学 | 第39页 |
| ·SPH-IPN孔隙率测定 | 第39-40页 |
| ·SPH-IPN的溶胀性能 | 第40页 |
| ·SPH-IPN的机械性能 | 第40页 |
| 3 结果和讨论 | 第40-54页 |
| ·SPH-IPN的制备 | 第40-44页 |
| ·IPN结构表征 | 第44-47页 |
| ·SPH-IPN形态学 | 第47-49页 |
| ·孔隙率 | 第49-50页 |
| ·SPH-IPN的溶胀 | 第50-52页 |
| ·SPH-IPN的机械性能 | 第52-54页 |
| 4 小结 | 第54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 第二章 SPH-IPN的刺激敏感性溶胀及载药和释药特性 | 第59-88页 |
| 1 材料与仪器 | 第59-60页 |
| 2 实验方法 | 第60-65页 |
| ·SPH-IPN刺激敏感性溶胀 | 第60-61页 |
| ·胰岛素含量测定 | 第61页 |
| ·载药与释药 | 第61-62页 |
| ·胰岛素稳定性 | 第62-63页 |
| ·SPH-IPN与胰岛素的相互作用 | 第63-64页 |
| ·SPH-IPN中水的状态 | 第64页 |
| ·SPH-IPN的保水性 | 第64-65页 |
| 3 结果与讨论 | 第65-83页 |
| ·刺激敏感性溶胀 | 第65-70页 |
| ·载药量 | 第70-71页 |
| ·体外释药 | 第71-74页 |
| ·胰岛素稳定性 | 第74-76页 |
| ·SPH-IPN与胰岛素相互作用 | 第76-80页 |
| ·SPH-IPN中水的状态 | 第80-81页 |
| ·SPH-IPN的保水性 | 第81-83页 |
| 4 小结 | 第83页 |
| 参考文献 | 第83-88页 |
| 第三章 SPH-IPN增加胰岛素口服吸收及促吸收机理 | 第88-126页 |
| 1 材料与仪器 | 第88-90页 |
| 2 实验方法 | 第90-99页 |
| ·生物利用度 | 第90-91页 |
| ·黏膜黏附力 | 第91-93页 |
| ·溶胀与保水 | 第93页 |
| ·胰岛素释放 | 第93-94页 |
| ·蛋白酶抑制 | 第94-96页 |
| ·Caco-2细胞单层转运 | 第96-97页 |
| ·胰岛素小肠转运 | 第97-98页 |
| ·小肠滞留 | 第98-99页 |
| 3 结果和讨论 | 第99-121页 |
| ·载胰岛素SPH-IPN口服生物利用度 | 第99-102页 |
| ·黏膜黏附力 | 第102-104页 |
| ·溶胀与保水 | 第104-105页 |
| ·胰岛素释放 | 第105-107页 |
| ·蛋白酶抑制 | 第107-114页 |
| ·Caco-2细胞单层转运 | 第114-118页 |
| ·胰岛素小肠转运 | 第118-120页 |
| ·小肠滞留 | 第120-121页 |
| 4 小结 | 第121-122页 |
| 参考文献 | 第122-126页 |
| 第四章 SPH-IPN的生物相容性 | 第126-167页 |
| 1 材料与仪器 | 第126-128页 |
| 2 实验方法 | 第128-137页 |
| ·细胞毒性 | 第128-129页 |
| ·基因(遗传)毒性 | 第129-131页 |
| ·组织相容性 | 第131-132页 |
| ·急性毒性 | 第132页 |
| ·亚急性毒性 | 第132-135页 |
| ·血液相容性 | 第135-136页 |
| ·单体、交联剂残留量测定 | 第136-137页 |
| 3 结果与讨论 | 第137-162页 |
| ·细胞毒性 | 第137-142页 |
| ·基因(遗传)毒性 | 第142-149页 |
| ·组织相容性 | 第149-150页 |
| ·急性毒性 | 第150页 |
| ·亚急性毒性 | 第150-158页 |
| ·血液相容性 | 第158-161页 |
| ·残留量 | 第161-162页 |
| 4 小结 | 第162页 |
| 参考文献 | 第162-167页 |
| 第二部分 用于提高蛋白质药物、DNA、siRNA功效的巯基化壳聚糖季胺盐新型纳米载体 | 第167-270页 |
| 第五章 巯基化壳聚糖季胺盐自组装纳米粒增加胰岛素口服吸收及其作用机理 | 第167-216页 |
| 1 材料与仪器 | 第168-170页 |
| 2 实验方法 | 第170-180页 |
| ·TMC的合成与纯化 | 第170页 |
| ·TMC-Cys的合成与纯化 | 第170-171页 |
| ·TMC-Cys的表征 | 第171-173页 |
| ·TMC-Cys的抑菌作用 | 第173页 |
| ·TMC-Cys的抗氧化作用 | 第173页 |
| 2 .6 TMC-Cys NP的制备 | 第173页 |
| ·纳米粒粒径和Zeta电势 | 第173-174页 |
| ·纳米粒形态 | 第174页 |
| ·包封率测定 | 第174-175页 |
| ·体外释放 | 第175页 |
| ·黏膜黏附力 | 第175-177页 |
| ·TMC-Cys NP促胰岛素小肠吸收 | 第177-179页 |
| ·降血糖效果 | 第179页 |
| ·生物相容性 | 第179-180页 |
| 3 结果和讨论 | 第180-210页 |
| ·TMC的合成与纯化 | 第180-182页 |
| ·TMC-Cys的合成与表征 | 第182-188页 |
| ·TMC-Cys的抑菌作用 | 第188页 |
| ·TMC-Cys的抗氧化作用 | 第188-189页 |
| ·TMC-Cys NP的制备和表征 | 第189-196页 |
| ·纳米粒形态 | 第196页 |
| ·体外释放 | 第196-198页 |
| ·黏膜黏附力 | 第198-201页 |
| ·促渗作用 | 第201-207页 |
| ·降血糖作用 | 第207-209页 |
| ·生物相容性 | 第209-210页 |
| 4 小结 | 第210-211页 |
| 参考文献 | 第211-216页 |
| 第六章 巯基化壳聚糖季胺盐纳米载体增加基因转染效率及其作用机理 | 第216-237页 |
| 1 材料与仪器 | 第216-218页 |
| 2 实验方法 | 第218-221页 |
| ·TMC-Cys NC的制备 | 第218页 |
| ·TMC-Cys NC的粒径和Zeta电势 | 第218页 |
| ·凝胶阻滞 | 第218页 |
| ·TMC-Cys NC的形态 | 第218-219页 |
| ·核酶抑制 | 第219页 |
| ·细胞黏附 | 第219页 |
| ·HEK293细胞摄取 | 第219-220页 |
| ·体外释放 | 第220页 |
| ·亚细胞分布 | 第220-221页 |
| ·体外细胞转染 | 第221页 |
| ·体内转染 | 第221页 |
| 3 结果和讨论 | 第221-233页 |
| ·TMC-Cys NC的制备和表征 | 第221-223页 |
| ·凝胶阻滞 | 第223-224页 |
| ·TMC-Cys NC的形态 | 第224-225页 |
| ·核酶抑制 | 第225-226页 |
| ·细胞黏附 | 第226页 |
| ·HEK293细胞摄取 | 第226-227页 |
| ·GSH浓度敏感性释放 | 第227-229页 |
| ·亚细胞分布 | 第229页 |
| ·体外细胞转染 | 第229-232页 |
| ·体内转染 | 第232-233页 |
| 4 小结 | 第233页 |
| 参考文献 | 第233-237页 |
| 第七章 靶向M细胞、巨噬细胞的MTC纳米载体增加siRNA口服给药功效及其作用机理 | 第237-270页 |
| 1 材料和仪器 | 第238-240页 |
| ·材料与试剂 | 第238-239页 |
| ·仪器 | 第239页 |
| ·细胞株与动物 | 第239-240页 |
| 2 实验方法 | 第240-246页 |
| ·MTC的合成与表征 | 第240页 |
| ·MTC纳米粒的制备 | 第240-241页 |
| ·纳米粒粒径和Zeta电势 | 第241页 |
| ·凝胶阻滞 | 第241页 |
| ·纳米粒形态 | 第241-242页 |
| ·血清稳定性 | 第242页 |
| ·包封率 | 第242页 |
| ·体外释放 | 第242-243页 |
| ·细胞黏附 | 第243页 |
| ·体外M细胞模型转运与摄取 | 第243页 |
| ·小肠M细胞转运与摄取 | 第243-244页 |
| ·巨噬细胞摄取 | 第244-245页 |
| ·巨噬细胞基因沉默 | 第245页 |
| ·细胞毒性(MTT试验) | 第245-246页 |
| ·siRNA口服给药 | 第246页 |
| 3 结果与讨论 | 第246-265页 |
| ·MTC的合成与表征 | 第246-248页 |
| ·MTC纳米粒粒径和Zeta电势 | 第248-250页 |
| ·凝胶阻滞 | 第250页 |
| ·纳米粒形态 | 第250-251页 |
| ·血清稳定性 | 第251-252页 |
| ·包封率 | 第252-253页 |
| ·体外释放 | 第253-254页 |
| ·细胞黏附 | 第254-255页 |
| ·体外M细胞模型转运与摄取 | 第255-258页 |
| ·小肠M细胞转运与摄取 | 第258-260页 |
| ·细胞摄取 | 第260-262页 |
| ·Raw 264.7细胞基因沉默 | 第262-263页 |
| ·细胞毒性(MTT试验) | 第263-264页 |
| ·siRNA口服给药 | 第264-265页 |
| 4 小结 | 第265-266页 |
| 参考文献 | 第266-270页 |
| 总结和展望 | 第270-275页 |
| 致谢 | 第275-277页 |
| 个人简历 | 第277-281页 |
| 文献综述 基于壳聚糖类载体的生物大分子药物给药系统 | 第281-319页 |
