| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述与课题设计 | 第15-23页 |
| 1.1 引言 | 第15页 |
| 1.2 阳荷化学成分的研究概况 | 第15-17页 |
| 1.2.1 挥发油 | 第15页 |
| 1.2.2 多糖 | 第15-16页 |
| 1.2.3 红色素 | 第16页 |
| 1.2.4 膳食纤维 | 第16页 |
| 1.2.5 氨基酸 | 第16-17页 |
| 1.2.6 锌 | 第17页 |
| 1.2.7 微量元素 | 第17页 |
| 1.2.8 其他化学成分 | 第17页 |
| 1.3 阳荷生物活性研究概况 | 第17-18页 |
| 1.3.1 降血糖活性 | 第17-18页 |
| 1.3.2 抗菌作用 | 第18页 |
| 1.3.3 抗氧化作用 | 第18页 |
| 1.4 阳荷相关产品 | 第18-21页 |
| 1.4.1 药材 | 第18-19页 |
| 1.4.2 搽剂 | 第19页 |
| 1.4.3 食品与功能食品 | 第19-21页 |
| 1.5 课题的提出及研究内容 | 第21-23页 |
| 第二章 醇提阳荷总黄酮制备工艺研究 | 第23-31页 |
| 2.1 引言 | 第23-24页 |
| 2.2 实验部分 | 第24-29页 |
| 2.2.1 材料与仪器 | 第24页 |
| 2.2.1.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.2.1.2 仪器设备 | 第24页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第24-26页 |
| 2.2.2.1 基本实验流程 | 第24页 |
| 2.2.2.2 阳荷粉末的制备 | 第24页 |
| 2.2.2.3 芦丁标准曲线的绘制 | 第24-25页 |
| 2.2.2.4 单因素实验 | 第25-26页 |
| 2.2.2.5 阳荷乙醇提取物总黄酮含量的计算 | 第26页 |
| 2.2.2.6 正交实验 | 第26页 |
| 2.2.3 实验结果与分析 | 第26-29页 |
| 2.2.3.1 单因素实验结果 | 第26-28页 |
| 2.2.3.2 正交实验结果与分析 | 第28-29页 |
| 2.2.3.3 验证实验 | 第29页 |
| 2.3 本章小结 | 第29-31页 |
| 第三章 阳荷挥发油提取工艺优化及GC-MS分析 | 第31-41页 |
| 3.1 引言 | 第31页 |
| 3.2 实验部分 | 第31-33页 |
| 3.2.1 材料与仪器 | 第31-32页 |
| 3.2.1.1 材料与试剂 | 第31页 |
| 3.2.1.2 实验仪器 | 第31-32页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第32-33页 |
| 3.2.2.1 挥发油的提取 | 第32页 |
| 3.2.2.2 单因素试验 | 第32页 |
| 3.2.2.3 正交试验 | 第32-33页 |
| 3.2.2.4 验证试验 | 第33页 |
| 3.2.2.5 GC-MS分析 | 第33页 |
| 3.3 结果与分析 | 第33-39页 |
| 3.3.1 单因素实验结果 | 第33-35页 |
| 3.3.1.1 超声时间对阳荷挥发油提取率的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.1.2 蒸馏时间对阳荷挥发油提取率的影响 | 第34页 |
| 3.3.1.3 料液比对阳荷挥发油提取率的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.2 正交实验结果 | 第35-37页 |
| 3.3.3 比较实验结果 | 第37页 |
| 3.3.4 验证实验结果 | 第37页 |
| 3.3.5 阳荷挥发油化学成分分析 | 第37-39页 |
| 3.4 本章小结 | 第39-41页 |
| 第四章 阳荷乙酸乙酯部位的分离纯化研究 | 第41-49页 |
| 4.1 引言 | 第41页 |
| 4.2 实验部分 | 第41-47页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第41页 |
| 4.2.2 实验试剂与仪器 | 第41-42页 |
| 4.2.3 阳荷乙醇提取物及各极性萃取物的提取 | 第42页 |
| 4.2.4 分离纯化 | 第42页 |
| 4.2.5 结构鉴定 | 第42-47页 |
| 4.3 本章小结 | 第47-49页 |
| 第五章 阳荷乙醇提取物及各极性部位改善HepG2细胞胰岛素抵抗模型糖代谢的机制 | 第49-63页 |
| 5.1 引言 | 第49-50页 |
| 5.2 实验部分 | 第50-54页 |
| 5.2.1 材料与仪器 | 第50-51页 |
| 5.2.1.1 细胞 | 第50页 |
| 5.2.1.2 材料与试剂 | 第50页 |
| 5.2.1.3 实验仪器 | 第50-51页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第51-54页 |
| 5.2.2.1 HepG2 细胞的培养 | 第51页 |
| 5.2.2.2 HepG2 细胞胰岛素抵抗模型的建立 | 第51-52页 |
| 5.2.2.3 建模验证实验 | 第52页 |
| 5.2.2.4 E001、F001、F002、F003和F004 对胰岛素抵抗细胞葡萄糖摄取率的影响 | 第52页 |
| 5.2.2.5 MTT检测Hep G2 细胞存活率 | 第52-53页 |
| 5.2.2.6 蛋白印记分析 | 第53-54页 |
| 5.3 结果与分析 | 第54-60页 |
| 5.3.1 HepG2 细胞胰岛素抵抗模型的建立 | 第54-55页 |
| 5.3.2 验证实验结果 | 第55-56页 |
| 5.3.3 E001、F001、F002、F003和F004 对胰岛素抵抗细胞葡萄糖摄取率的影响 | 第56-58页 |
| 5.3.4 E001对HepG2 细胞的存活率的影响 | 第58-59页 |
| 5.3.5 E001 对胰岛素抵抗细胞模型蛋白表达的影响 | 第59-60页 |
| 5.3.5.1 蛋白标准曲线图 | 第59页 |
| 5.3.5.2 E001 对胰岛素抵抗模型胰岛素信号通路蛋白的影响 | 第59-60页 |
| 5.4 本章小结 | 第60-63页 |
| 第六章 阳荷乙醇提取物及不同极性萃取物体外抑菌活性研究 | 第63-71页 |
| 6.1 引言 | 第63页 |
| 6.2 实验部分 | 第63-69页 |
| 6.2.1 材料与仪器 | 第63-65页 |
| 6.2.1.1 实验材料 | 第63页 |
| 6.2.1.2 试剂与仪器 | 第63-64页 |
| 6.2.1.3 培养基的制备 | 第64页 |
| 6.2.1.4 菌种的活化 | 第64页 |
| 6.2.1.5 菌悬液的制备 | 第64页 |
| 6.2.1.6 抗菌初筛样品的制备 | 第64页 |
| 6.2.1.7 抑菌活性初筛(滤纸片法) | 第64页 |
| 6.2.1.8 最低抑菌浓度(MIC)样品的制备 | 第64页 |
| 6.2.1.9 最低抑菌浓度(MIC)的测定 | 第64-65页 |
| 6.2.1.10 最低杀菌浓度(MBC)的测定 | 第65页 |
| 6.2.2 结果与分析 | 第65-69页 |
| 6.2.2.1 乙醇提取物及各极性萃取物的抗菌作用 | 第65-67页 |
| 6.2.2.2 MIC值的测定 | 第67页 |
| 6.2.2.3 MBC值的测定 | 第67-69页 |
| 6.3 本章小结 | 第69-71页 |
| 第七章 结论 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
