| 缩略语表 | 第5-8页 |
| 摘要 | 第8-13页 |
| ABSTRACT | 第13-18页 |
| 前言 | 第19-21页 |
| 文献回顾 | 第21-37页 |
| 1 材料 | 第37-45页 |
| 1.1 仪器设备 | 第37-38页 |
| 1.2 实验试剂 | 第38-41页 |
| 1.3 其它材料 | 第41-44页 |
| 1.4 溶液配制 | 第44-45页 |
| 2 方法 | 第45-56页 |
| 2.1 外周血单个核细胞(PBMC)分离 | 第45-46页 |
| 2.2 人角质形成细胞细胞培养 | 第46-47页 |
| 2.3 siRNA转染 | 第47页 |
| 2.4 免疫组化染色 | 第47-48页 |
| 2.5 qRT-PCR | 第48-49页 |
| 2.6 免疫荧光染色 | 第49页 |
| 2.7 免疫印迹实验 | 第49-52页 |
| 2.8 小鼠耳部组织单细胞悬液制备 | 第52页 |
| 2.9 流式细胞术 | 第52页 |
| 2.10 免疫共沉淀 | 第52-53页 |
| 2.11 ELISA实验 | 第53页 |
| 2.13 IMQ和MC903小鼠模型的构建 | 第53-54页 |
| 2.14 RhoA和Rac1 GST-Pull down实验 | 第54页 |
| 2.15 葡萄糖摄取检测 | 第54页 |
| 2.16 乳酸释放检测 | 第54-55页 |
| 2.17 细胞外PH检测 | 第55页 |
| 2.18 乳酸脱氢酶活性检测 | 第55页 |
| 2.19 数据统计分析 | 第55-56页 |
| 3 结果 | 第56-82页 |
| 3.1 CD100在银屑病的表达及其与病情严重程度的相关性 | 第56-60页 |
| 3.2 CD100受体PlxnB2在银屑病的表达 | 第60-64页 |
| 3.3 CD100通过受体PlxnB2促进角质形成细胞炎症因子表达和NLRP3炎症小体活化 | 第64-72页 |
| 3.4 CD100通过受体PlxnB2调控Rho GTPase信号促进角质形成细胞NF-κB信号通路和NLRP3炎症小体活化 | 第72-76页 |
| 3.5 CD100通过受体PlxnB2调控Rho GTPase信号促进角质形成细胞糖酵解代谢 | 第76-82页 |
| 4 讨论 | 第82-89页 |
| 小结 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-105页 |
| 个人简历和研究成果 | 第105-107页 |
| 致谢 | 第107-108页 |
