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CD100调控角质形成细胞炎症应答在银屑病发病中的作用及机制研究

缩略语表第5-8页
摘要第8-13页
ABSTRACT第13-18页
前言第19-21页
文献回顾第21-37页
1 材料第37-45页
    1.1 仪器设备第37-38页
    1.2 实验试剂第38-41页
    1.3 其它材料第41-44页
    1.4 溶液配制第44-45页
2 方法第45-56页
    2.1 外周血单个核细胞(PBMC)分离第45-46页
    2.2 人角质形成细胞细胞培养第46-47页
    2.3 siRNA转染第47页
    2.4 免疫组化染色第47-48页
    2.5 qRT-PCR第48-49页
    2.6 免疫荧光染色第49页
    2.7 免疫印迹实验第49-52页
    2.8 小鼠耳部组织单细胞悬液制备第52页
    2.9 流式细胞术第52页
    2.10 免疫共沉淀第52-53页
    2.11 ELISA实验第53页
    2.13 IMQ和MC903小鼠模型的构建第53-54页
    2.14 RhoA和Rac1 GST-Pull down实验第54页
    2.15 葡萄糖摄取检测第54页
    2.16 乳酸释放检测第54-55页
    2.17 细胞外PH检测第55页
    2.18 乳酸脱氢酶活性检测第55页
    2.19 数据统计分析第55-56页
3 结果第56-82页
    3.1 CD100在银屑病的表达及其与病情严重程度的相关性第56-60页
    3.2 CD100受体PlxnB2在银屑病的表达第60-64页
    3.3 CD100通过受体PlxnB2促进角质形成细胞炎症因子表达和NLRP3炎症小体活化第64-72页
    3.4 CD100通过受体PlxnB2调控Rho GTPase信号促进角质形成细胞NF-κB信号通路和NLRP3炎症小体活化第72-76页
    3.5 CD100通过受体PlxnB2调控Rho GTPase信号促进角质形成细胞糖酵解代谢第76-82页
4 讨论第82-89页
小结第89-91页
参考文献第91-105页
个人简历和研究成果第105-107页
致谢第107-108页

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