| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 主要符号表 | 第12-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-23页 |
| 1.1 中药在鱼类细菌性疾病防治上的应用研究 | 第13-14页 |
| 1.1.1 抑制气单胞菌(Aeromonasspp.)的中草药 | 第13页 |
| 1.1.2 抑制弧菌(Vibriospp.)的中草药 | 第13-14页 |
| 1.1.3 抑制爱德华氏菌(Edwardsiellaspp.)的中草药 | 第14页 |
| 1.2 中药有效抗菌成分的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.2.1 黄酮类 | 第14-15页 |
| 1.2.2 鞣质类 | 第15页 |
| 1.2.3 生物碱类 | 第15页 |
| 1.2.4 醌类 | 第15页 |
| 1.2.5 有机酸类 | 第15-16页 |
| 1.3 中药有效成分的提取及分离纯化技术研究进展 | 第16-20页 |
| 1.3.1 中药有效成分的提取技术 | 第16-17页 |
| 1.3.2 中药有效成分的分离纯化技术 | 第17-20页 |
| 1.4 微量热在药物活性评价中的研究概况 | 第20-21页 |
| 1.4.1 微量热法测定细菌生长曲线的原理 | 第20页 |
| 1.4.2 药物作用下细菌生长热谱曲线热动力学研究 | 第20-21页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第21-23页 |
| 1.5.1 研究背景 | 第21页 |
| 1.5.2 研究目的意义 | 第21页 |
| 1.5.3 研究内容 | 第21-23页 |
| 第2章 正交试验优选诃子鞣质超声提取工艺 | 第23-31页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-25页 |
| 2.1.1 药品与试剂 | 第23页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第23页 |
| 2.1.3 正交试验设计 | 第23-24页 |
| 2.1.4 供试品的制备 | 第24页 |
| 2.1.5 色谱条件 | 第24页 |
| 2.1.6 线性关系的考察 | 第24页 |
| 2.1.7 精密度试验 | 第24-25页 |
| 2.1.8 重复性试验 | 第25页 |
| 2.1.9 稳定性试验 | 第25页 |
| 2.1.10 加样回收试验 | 第25页 |
| 2.1.11 供试品中没食子酸含量测定 | 第25页 |
| 2.2 结果 | 第25-28页 |
| 2.2.1 没食子酸含量测定方法验证 | 第25-27页 |
| 2.2.2 正交试验结果 | 第27-28页 |
| 2.3 讨论 | 第28-31页 |
| 2.3.1 提取方法的选择 | 第28-29页 |
| 2.3.2 没食子酸含量测定方法 | 第29-30页 |
| 2.3.3 正交试验结果分析 | 第30-31页 |
| 第3章 诃子抗菌组分的分离纯化及活性测定 | 第31-41页 |
| 3.1 材料与方法 | 第31-33页 |
| 3.1.1 材料与仪器 | 第31-32页 |
| 3.1.2 诃子醇提物的制备 | 第32页 |
| 3.1.3 分析型HSCCC优化诃子醇提物分离体系 | 第32-33页 |
| 3.1.4 制备型HSCCC分离制备诃子中有效组分 | 第33页 |
| 3.1.5 HSCCC峰纯度检测 | 第33页 |
| 3.1.6 微量热法测定分离组分的抑菌作用 | 第33页 |
| 3.1.7 诃子抑菌成分的结构鉴定 | 第33页 |
| 3.2 结果 | 第33-39页 |
| 3.2.1 诃子HSCCC分离体系的优化 | 第33-35页 |
| 3.2.2 HSCCC分离制备诃子各组分 | 第35-36页 |
| 3.2.3 诃子各分离组分对菌株B11和B29生物活性测定 | 第36-38页 |
| 3.2.4 诃子抑菌成分的纯度分析及结构鉴定 | 第38-39页 |
| 3.3 讨论 | 第39-41页 |
| 3.3.1 诃子HSCCC溶剂体系优化 | 第39页 |
| 3.3.2 诃子各组分的分离制备 | 第39-40页 |
| 3.3.3 诃子各分离组分的抑菌活性 | 第40-41页 |
| 第4章 虎杖抗菌组分的分离纯化及活性测定 | 第41-49页 |
| 4.1 材料与方法 | 第41-42页 |
| 4.1.1 材料与仪器 | 第41-42页 |
| 4.1.2 虎杖醇提物的制备 | 第42页 |
| 4.1.3 分析型HSCCC筛选虎杖醇提物分离体系 | 第42页 |
| 4.1.4 制备型HSCCC分离制备虎杖中有效组分 | 第42页 |
| 4.1.5 HSCCC峰纯度检测 | 第42页 |
| 4.1.6 微量热法测定分离组分的抑菌作用 | 第42页 |
| 4.2 结果 | 第42-47页 |
| 4.2.1 虎杖HSCCC分离体系的确定 | 第42-43页 |
| 4.2.2 HSCCC分离制备虎杖各组分 | 第43-44页 |
| 4.2.3 HSCCC峰纯度检测 | 第44页 |
| 4.2.4 虎杖各分离组分对菌株B11和B29生物活性测定 | 第44-47页 |
| 4.3 讨论 | 第47-49页 |
| 4.3.1 虎杖提取条件的选择 | 第47页 |
| 4.3.2 虎杖HSCCC的分离制备 | 第47-48页 |
| 4.3.3 虎杖各分离组分的抑菌活性 | 第48-49页 |
| 第5章 没食子酸对斑马鱼非特异免疫功能的影响 | 第49-58页 |
| 5.1 材料与方法 | 第49-51页 |
| 5.1.1 材料与仪器 | 第49-50页 |
| 5.1.2 试验日粮的配制 | 第50页 |
| 5.1.3 半致死浓度的测定 | 第50页 |
| 5.1.4 试验分组及方法 | 第50-51页 |
| 5.2 结果 | 第51-56页 |
| 5.2.1 嗜水气单胞菌人工感染斑马鱼试验 | 第51-52页 |
| 5.2.2 免疫指标测定结果 | 第52-55页 |
| 5.2.3 没食子酸对斑马鱼感染嗜水气单胞菌的防治作用 | 第55-56页 |
| 5.3 讨论 | 第56-58页 |
| 5.3.1 斑马鱼嗜水气单胞菌感染模型的建立 | 第56页 |
| 5.3.2 没食子酸对斑马鱼非特异免疫力的影响 | 第56-58页 |
| 第6章 总结与展望 | 第58-60页 |
| 6.1 主要成果 | 第58-59页 |
| 6.2 创新之处 | 第59页 |
| 6.3 展望 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 附录 | 第68-76页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第76页 |
