| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-15页 |
| 1 灵芝孢子破壁的研究 | 第10-11页 |
| 2 多糖的生物活性 | 第11-12页 |
| ·多糖的免疫调节作用 | 第11页 |
| ·多糖的抗病毒活性 | 第11-12页 |
| ·多糖的抗肿瘤作用 | 第12页 |
| ·多糖的抗氧化作用 | 第12页 |
| ·其它生物活性作用 | 第12页 |
| 3 多糖的提取研究 | 第12-13页 |
| ·微波提取技术 | 第13页 |
| ·超声波提取技术 | 第13页 |
| ·酶法提取 | 第13页 |
| 4 研究课题的目的、意义及工作内容 | 第13-15页 |
| ·研究课题的意义 | 第13-14页 |
| ·课题研究内容 | 第14-15页 |
| 第二章 破壁灵芝孢子中多糖的提取工艺研究 | 第15-28页 |
| 1 材料与试剂 | 第15-16页 |
| ·材料 | 第15页 |
| ·试剂 | 第15页 |
| ·仪器和设备 | 第15-16页 |
| 2 提取工艺研究 | 第16页 |
| ·多糖测定方法的确定 | 第16页 |
| ·传统的热水浸提法 | 第16页 |
| ·酶法辅助提取法 | 第16页 |
| ·超临界CO_2萃取破壁灵芝孢子中的多糖工艺 | 第16页 |
| ·超声波辅助提取工艺 | 第16页 |
| 3 实验结果与分析 | 第16-27页 |
| ·多糖测定方法的确定 | 第16-17页 |
| ·最大吸收波长选择 | 第16-17页 |
| ·标准曲线配置 | 第17页 |
| ·多糖提取工艺研究 | 第17-27页 |
| ·传统热水浸提法 | 第17-21页 |
| ·酶法辅助提取破壁灵芝孢子中的多糖的研究 | 第21-24页 |
| ·超临界CO_2萃取破壁灵芝孢子中的多糖工艺 | 第24-25页 |
| ·超声波辅助提取工艺 | 第25-26页 |
| ·验证试验 | 第26-27页 |
| 4 本章小结 | 第27-28页 |
| 第三章 破壁灵芝孢子中多糖的脱色与脱蛋白工艺研究 | 第28-37页 |
| 1 实验材料与设备 | 第28页 |
| ·材料 | 第28页 |
| ·试剂 | 第28页 |
| ·仪器和设备 | 第28页 |
| 2 实验方法 | 第28-29页 |
| ·多糖保留率和脱色率的测定 | 第28页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第28-29页 |
| ·脱色工艺的研究 | 第29页 |
| ·脱蛋白工艺研究 | 第29页 |
| 3 结果与讨论 | 第29-36页 |
| ·脱色工艺研究 | 第29-32页 |
| ·活性炭的选择 | 第29-30页 |
| ·脱色时间的选择 | 第30页 |
| ·脱色温度的选择 | 第30-31页 |
| ·pH的选择 | 第31页 |
| ·正交实验 | 第31-32页 |
| ·脱蛋白工艺研究 | 第32-36页 |
| ·酶用量的选择 | 第32-33页 |
| ·脱蛋白时间的选择 | 第33页 |
| ·脱蛋白温度的选择 | 第33-34页 |
| ·pH的选择 | 第34页 |
| ·正交实验 | 第34-36页 |
| 4 本章小结 | 第36-37页 |
| 第四章 破壁灵芝孢子多糖抗氧化研究 | 第37-42页 |
| 1 材料与方法 | 第37-39页 |
| ·主要试剂 | 第37页 |
| ·主要仪器 | 第37页 |
| ·实验材料 | 第37页 |
| ·抗氧化测定 | 第37-39页 |
| ·试剂的配制 | 第37-38页 |
| ·清除羟基自由基·OH能力的测定 | 第38页 |
| ·清除超氧阴离子自由基(O_2~-)能力的测定 | 第38页 |
| ·清除DPPH·能力的测定 | 第38-39页 |
| ·还原能力的测定 | 第39页 |
| 2 结果与讨论 | 第39-41页 |
| ·破壁灵芝孢子多糖提取物对羟基自由基·OH的清除作用 | 第39页 |
| ·破壁灵芝孢子多糖提取物对超氧阴离子(O_2~-)的清除作用 | 第39-40页 |
| ·破壁灵芝孢子多糖提取物对DPPH·的清除作用 | 第40-41页 |
| ·破壁灵芝孢子多糖提取物还原能力的测定 | 第41页 |
| 3 本章小结 | 第41-42页 |
| 第五章 本论文主要结论与展望 | 第42-44页 |
| 参考文献 | 第44-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 作者简历 | 第52页 |