| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 第一章 OX-LDL诱导THP-1细胞焦亡 | 第12-23页 |
| 1.材料与方法 | 第12-19页 |
| 1.1 主要试剂 | 第12-13页 |
| 1.2 主要仪器及主要溶液的配制 | 第13-15页 |
| 1.2.1 主要仪器 | 第13-14页 |
| 1.2.2 主要溶液的配制 | 第14-15页 |
| 1.3 方法 | 第15-19页 |
| 1.3.1 细胞培养 | 第15页 |
| 1.3.2 Caspase-1抑制实验 | 第15-16页 |
| 1.3.3 pyroptosis发生率 | 第16页 |
| 1.3.4 细胞毒性检测 | 第16-17页 |
| 1.3.5 ELISA检测IL-1β | 第17页 |
| 1.3.6 荧光定量PCR检测 | 第17页 |
| 1.3.7 RNA反转录为cDNA | 第17页 |
| 1.3.8 Real-time PCR检测目的基因 | 第17-18页 |
| 1.3.9 引物合成 | 第18页 |
| 1.3.10 Western-blot | 第18-19页 |
| 1.3.11 统计分析 | 第19页 |
| 2.结果 | 第19-21页 |
| 2.1 OX-LDL诱导的THP-1细胞发生了细胞焦亡。 | 第19-20页 |
| 2.2 细胞焦亡相关分子Caspase-1、IL-1β在OX-LDL诱导的THP-1细胞中的表达情况 | 第20页 |
| 2.3 THP-1各组细胞Caspase-1抑制 | 第20-21页 |
| 3.讨论 | 第21-23页 |
| 第二章 NEXN在OX-LDL诱导的THP-1细胞中调节细胞焦亡 | 第23-37页 |
| 1. | 第23-31页 |
| 1.1 主要试剂 | 第23-24页 |
| 1.2 主要仪器及主要溶液的配制 | 第24-26页 |
| 1.2.1 主要仪器 | 第24页 |
| 1.2.2 主要溶液的配制 | 第24-26页 |
| 1.3 方法 | 第26-31页 |
| 1.3.1 细胞培养 | 第26-27页 |
| 1.3.2 Caspase-1抑制实验 | 第27页 |
| 1.3.3 细胞转染 | 第27-28页 |
| 1.3.4 pyroptosis发生率 | 第28页 |
| 1.3.5 细胞毒性检测 | 第28页 |
| 1.3.6 ELISA检测IL-1β | 第28-29页 |
| 1.3.7 荧光定量PCR检测 | 第29-30页 |
| 1.3.8 Western-blot | 第30-31页 |
| 1.3.9 统计分析 | 第31页 |
| 2.结果 | 第31-34页 |
| 2.1 OX-LDL诱导的THP-1的细胞发生细胞焦亡的同时NEXN的基因及蛋白水平均增高。 | 第31页 |
| 2.2 siRNA干扰THP-1细胞NEXN基因后,OX-LDL诱导的THP-1细胞焦亡减少。 | 第31-33页 |
| 2.3 过表达NEXN后导致OX-LDL诱导的THP-1细胞焦亡发生率增高 | 第33-34页 |
| 3.讨论 | 第34-37页 |
| 文献综述 | 第37-40页 |
| 结语 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-44页 |
| 附录 | 第44-45页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46页 |
