摘要 | 第8-10页 |
ABSTRACT | 第10-11页 |
第1章 文献综述 | 第12-20页 |
1.1 生物脱氮途径 | 第13-16页 |
1.1.1 厌氧氨氧化生化反应机理 | 第13-14页 |
1.1.2 传统生物脱氮理论 | 第14页 |
1.1.3 异养硝化好氧-反硝化作用(HN-AD)代谢途径 | 第14-16页 |
1.2 异养硝化作用的分子生物学研究 | 第16-17页 |
1.2.1 硝化作用的关键酶 | 第16-17页 |
1.2.2 异养硝化作用的电子传递 | 第17页 |
1.3 好氧反硝化作用的分子生物学研究 | 第17-20页 |
1.3.1 反硝化作用的关键酶 | 第17-18页 |
1.3.2 好氧反硝化作用的电子传递 | 第18-20页 |
第2章 绪论 | 第20-24页 |
2.1 研究目的与意义 | 第20页 |
2.2 研究内容 | 第20-21页 |
2.3 技术路线 | 第21页 |
2.4 本文的创新点 | 第21-24页 |
第3章 耐冷好氧亚硝酸盐型反硝化细菌的筛选、鉴定及脱氮特性研究 | 第24-36页 |
3.1 实验材料 | 第24-26页 |
3.1.1 菌株来源 | 第24页 |
3.1.2 培养基 | 第24页 |
3.1.3 实验试剂与试剂盒 | 第24-25页 |
3.1.4 实验仪器 | 第25-26页 |
3.2 实验方法 | 第26-28页 |
3.2.1 耐冷亚硝酸盐型反硝化细菌的富集、分离和纯化 | 第26页 |
3.2.2 耐冷好氧亚硝酸盐型反硝化细菌的筛选 | 第26页 |
3.2.3 细菌的鉴定 | 第26-27页 |
3.2.4 各因素对亚硝酸氮和总氮去除效果的影响 | 第27页 |
3.2.5 检测方法 | 第27-28页 |
3.2.6 数据处理与分析 | 第28页 |
3.3 结果与分析 | 第28-33页 |
3.3.1 菌株Y-9的形态学观察 | 第28-29页 |
3.3.2 特异性磷脂脂肪酸鉴定 | 第29页 |
3.3.3 16SrRNA序列与系统发育分析 | 第29-30页 |
3.3.4 温度对脱氮能力的影响 | 第30页 |
3.3.5 pH对脱氮能力的影响 | 第30-31页 |
3.3.6 碳源对反硝化能力的影响 | 第31-32页 |
3.3.7 亚硝酸盐浓度对反硝化能力的影响 | 第32页 |
3.3.8 溶解氧对脱氮能力的影响 | 第32-33页 |
3.4 本章小结与讨论 | 第33-36页 |
第4章 PseudomonasputidaY-9异养硝化和好氧反硝化性能研究 | 第36-48页 |
4.1 实验材料 | 第36-37页 |
4.1.1 样品来源 | 第36页 |
4.1.2 培养基 | 第36-37页 |
4.1.3 实验试剂 | 第37页 |
4.1.4 实验仪器 | 第37页 |
4.2 实验方法 | 第37-38页 |
4.2.1 PseudomonasputidaY-9的营养方式 | 第37页 |
4.2.2 PseudomonasputidaY-9异养铵氧化特性的研究 | 第37页 |
4.2.3 PseudomonasputidaY-9对NO_3~--N和NO_2~--N的利用与去除 | 第37-38页 |
4.2.4 PseudomonasputidaY-9对有机氮的利用与去除 | 第38页 |
4.2.5 PseudomonasputidaY-9同步硝化反硝化能力的探究 | 第38页 |
4.2.6 检测方法 | 第38页 |
4.2.7 数据处理与分析 | 第38页 |
4.3 结果与分析 | 第38-45页 |
4.3.1 PseudomonasputidaY-9的营养方式 | 第38-39页 |
4.3.2 PseudomonasputidaY-9的异养铵氧化特性 | 第39-40页 |
4.3.3 PseudomonasputidaY-9对NO_3~--N的利用与去除 | 第40-41页 |
4.3.4 PseudomonasputidaY-9对NO_2~--N的利用与去除 | 第41-42页 |
4.3.5 PseudomonasputidaY-9对有机氮的利用与去除 | 第42-43页 |
4.3.6 PseudomonasputidaY-9在以NH_4~+-N和NO_3~--N为混合氮源时的氮利用 | 第43-44页 |
4.3.7 PseudomonasputidaY-9在以NH_4~+-N和NO_2~--N为混合氮源时的氮利用 | 第44-45页 |
4.4 本章小结与讨论 | 第45-48页 |
第5章 PseudomonasputidaY-9异养铵氧化途径研究 | 第48-58页 |
5.1 实验材料 | 第48-49页 |
5.1.1 样品来源 | 第48页 |
5.1.2 培养基 | 第48页 |
5.1.3 实验试剂 | 第48页 |
5.1.4 实验仪器 | 第48-49页 |
5.2 实验方法 | 第49-50页 |
5.2.1 PseudomonasputidaY-9对NH2OH的利用 | 第49页 |
5.2.2 烯丙基硫脲(ATU)对PseudomonasputidaY-9NH4_+~-N和NO_2~--N利用的影响 | 第49页 |
5.2.3 PseudomonasputidaY-9铵氧化过程中N2O和N2的检测 | 第49-50页 |
5.2.4 其它硝化抑制剂对PseudomonasputidaY-9NH4+-N利用的影响 | 第50页 |
5.2.5 PseudomonasputidaY-9对高浓度NH4+-N降解能力的探究 | 第50页 |
5.2.6 检测方法 | 第50页 |
5.2.7 数据处理与分析 | 第50页 |
5.3 结果与分析 | 第50-56页 |
5.3.1 PseudomonasputidaY-9对NH2OH的利用 | 第50-51页 |
5.3.2 烯丙基硫脲(ATU)对PseudomonasputidaY-9NH4+-N和NO2--N利用的影响 | 第51-53页 |
5.3.3 PseudomonasputidaY-9铵氧化气体产物中N2O和N2的检测 | 第53页 |
5.3.4 硝化抑制剂正丁基磷代磷酰三胺(DMPP)、双氰胺(DCD)、叠用的影响 | 第53-55页 |
5.3.5 PseudomonasputidaY-9对高浓度NH4+-N降解能力的探究 | 第55-56页 |
5.4 本章小结与讨论 | 第56-58页 |
第6章 PseudomonasputidaY-9氮代谢过程关键酶的提取及活性分析 | 第58-62页 |
6.1 实验材料 | 第58页 |
6.1.1 样品来源 | 第58页 |
6.1.2 培养基 | 第58页 |
6.1.3 实验试剂 | 第58页 |
6.1.4 实验仪器 | 第58页 |
6.2 实验方法 | 第58-60页 |
6.2.1 超声波法提取粗酶 | 第58-59页 |
6.2.2 酶粗液蛋白质浓度的测定 | 第59页 |
6.2.3 HAO、NAR、NiR酶活性测试 | 第59页 |
6.2.4 检测方法 | 第59-60页 |
6.3 结果与分析 | 第60-61页 |
6.3.1 羟胺氧化酶(HAO)活性的测定 | 第60页 |
6.3.2 硝酸还原酶(NAR)和亚硝酸还原酶(NIR)活性的测定 | 第60-61页 |
6.4 本章小结与讨论 | 第61-62页 |
第7章 结论 | 第62-64页 |
参考文献 | 第64-72页 |
致谢 | 第72-74页 |
参与科研及论文发表情况 | 第74页 |