| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-19页 |
| 1.1 研究背景 | 第9页 |
| 1.2 国内外手性分离材料的研究现状 | 第9-12页 |
| 1.2.1 传统的手性分离材料 | 第9-10页 |
| 1.2.2 基于纳米材料的手性分离材料 | 第10-11页 |
| 1.2.3 MOF手性分离材料 | 第11-12页 |
| 1.3 手性分离材料在色谱固定相中的应用 | 第12-16页 |
| 1.3.1 纤维素类手性固定相 | 第12-13页 |
| 1.3.2 环糊精类手性固定相 | 第13-14页 |
| 1.3.3 手性MOF固定相 | 第14-16页 |
| 1.4 纳米材料和MOF材料在固相萃取中的应用 | 第16-17页 |
| 1.5 研究思路和主要研究内容 | 第17-19页 |
| 1.5.1 研究思路 | 第17页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第17-18页 |
| 1.5.3 主要技术路线 | 第18-19页 |
| 第二章 涂覆和分子间缩聚型SiO_2@Ag多糖类手性固定相的制备及评价 | 第19-34页 |
| 2.1 引言 | 第19页 |
| 2.2 实验仪器及药品 | 第19-20页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.2.2 实验药品 | 第20页 |
| 2.3 SiO_2@Ag核壳材料的制备 | 第20-21页 |
| 2.3.1 氨基硅胶的制备 | 第20-21页 |
| 2.3.2 巯基硅胶的制备 | 第21页 |
| 2.3.3 SiO_2@Ag的制备 | 第21页 |
| 2.4 纤维素涂覆型SiO_2@Ag手性固定相的制备 | 第21-22页 |
| 2.5 纤维素键合型SiO_2@Ag手性固定相的制备 | 第22页 |
| 2.6 结果与讨论 | 第22-33页 |
| 2.6.1 SiO_2@Ag核壳材料的表征 | 第22-24页 |
| 2.6.2 Ag NPs修饰的CSP-1和CSP-2的制备 | 第24-26页 |
| 2.6.3 手性化合物在AgNPs修饰的CSP-1上的拆分 | 第26-28页 |
| 2.6.4 流动相中异丙醇含量对分析物在AgNPs修饰的CSP-1的保留和立体选择性的影响 | 第28-29页 |
| 2.6.5 手性化合物在AgNPs修饰的CSP-2上的拆分 | 第29-31页 |
| 2.6.6 流动相中异丙醇含量对分析物在AgNPs修饰的CSP-2的保留和立体选择性的影响 | 第31页 |
| 2.6.7 AgNPs修饰的CSP-1和CSP-2的手性分离能力对比 | 第31-33页 |
| 2.7 本章小结 | 第33-34页 |
| 第三章 SiO_2@Ag-L-半胱氨酸手性分离材料的制备及应用 | 第34-44页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 实验仪器与药品 | 第34-35页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第34页 |
| 3.2.2 实验药品 | 第34-35页 |
| 3.3 SiO_2@Ag-L-半胱氨酸手性分离材料的制备 | 第35页 |
| 3.4 D,L-苏氨酸的分离 | 第35页 |
| 3.5 SiO_2@Ag-L-半胱氨酸富集双酚A | 第35-36页 |
| 3.5.1 静态吸附实验 | 第35页 |
| 3.5.2 动态吸附实验 | 第35-36页 |
| 3.5.3 固相萃取程序 | 第36页 |
| 3.5.4 自来水及牛奶中双酚A的检测 | 第36页 |
| 3.6 结果与讨论 | 第36-42页 |
| 3.6.1 SiO_2@Ag-L-半胱氨酸的表征 | 第36-37页 |
| 3.6.2 D,L-苏氨酸的分离 | 第37-38页 |
| 3.6.3 静态吸附实验 | 第38页 |
| 3.6.4 动态吸附实验 | 第38-39页 |
| 3.6.5 固相萃取程序 | 第39-41页 |
| 3.6.6 SiO_2@Ag-L-半胱氨酸的SPE柱的再生研究 | 第41页 |
| 3.6.7 SiO_2@Ag-L-半胱氨酸的SPE柱对实际样品的分析 | 第41-42页 |
| 3.7 本章小结 | 第42-44页 |
| 第四章 基于环糊精配体金属有机骨架的制备及应用 | 第44-55页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 实验仪器及药品 | 第44页 |
| 4.2.1 实验仪器 | 第44页 |
| 4.2.2 实验药品 | 第44页 |
| 4.3 CD-MOF手性固定相的制备 | 第44-45页 |
| 4.4 CD-MOF固相萃取填料的制备 | 第45页 |
| 4.5 CD-MOF对磺胺类抗生素的富集 | 第45-46页 |
| 4.5.1 静态吸附实验 | 第45页 |
| 4.5.2 动态吸附实验 | 第45页 |
| 4.5.3 实际样品的测定 | 第45-46页 |
| 4.6 结果与讨论 | 第46-54页 |
| 4.6.1 CD-MOF手性固定相的表征 | 第46页 |
| 4.6.2 CD-MOF固相萃取填料的表征 | 第46-47页 |
| 4.6.3 CD-MOF手性固定相的评价 | 第47-48页 |
| 4.6.4 流动相对分离效果的影响 | 第48-49页 |
| 4.6.5 CD-MOF对磺胺类抗生素的富集 | 第49-54页 |
| 4.7 本章小结 | 第54-55页 |
| 第五章 自组装GO@CD-MOF过滤膜的制备及应用 | 第55-61页 |
| 5.1 引言 | 第55页 |
| 5.2 实验仪器及药品 | 第55-56页 |
| 5.2.1 实验仪器 | 第55-56页 |
| 5.2.2 实验药品 | 第56页 |
| 5.3 GO@CD-MOF的制备 | 第56页 |
| 5.4 GO@CD-MOF过滤膜的制备 | 第56页 |
| 5.5 实际样品的测定 | 第56页 |
| 5.6 结果与讨论 | 第56-60页 |
| 5.6.1 GO@CD-MOF的表征 | 第56-57页 |
| 5.6.2 GO@CD-MOF过滤膜对柚皮苷的富集 | 第57-60页 |
| 5.7 本章小结 | 第60-61页 |
| 第六章 结论与创新点 | 第61-63页 |
| 6.1 结论 | 第61页 |
| 6.2 创新点 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 个人简介 | 第71页 |
