| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 第一部分 电离辐射后肠道细胞焦亡的发现 | 第12-24页 |
| 1.1 实验材料 | 第13-15页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第13页 |
| 1.1.2 主要试剂及耗材 | 第13-14页 |
| 1.1.3 主要溶液的配置 | 第14页 |
| 1.1.4 主要仪器设备 | 第14-15页 |
| 1.2 实验方法 | 第15-17页 |
| 1.2.1 组织总蛋白的提取 | 第15页 |
| 1.2.2 BCA法蛋白定量 | 第15页 |
| 1.2.3 SDS-PAGE蛋白电泳 | 第15-16页 |
| 1.2.4 转膜 | 第16页 |
| 1.2.5 封闭、抗原抗体反应 | 第16-17页 |
| 1.2.6 显影 | 第17页 |
| 1.3 实验结果 | 第17-21页 |
| 1.3.1 小鼠受照后不同时间点肠道中炎症性caspase的表达 | 第17-18页 |
| 1.3.2 不同剂量照射后小鼠肠道中炎症性caspase的表达 | 第18-19页 |
| 1.3.3 正常小鼠小肠的不同部位的炎症性caspase的表达 | 第19页 |
| 1.3.4 不同剂量照射后小鼠的近端小肠和远端小肠的caspase-1表达情况 | 第19-20页 |
| 1.3.5 不同剂量照射后小鼠的近端小肠和远端小肠的炎症性caspase及焦亡执行分子的表达 | 第20-21页 |
| 1.4 讨论 | 第21-24页 |
| 第二部分 生物标志物的探寻 | 第24-44页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 实验动物及细胞 | 第25页 |
| 2.1.2 主要试剂及耗材 | 第25-26页 |
| 2.1.3 主要溶液的配制 | 第26-27页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-30页 |
| 2.2.1 小鼠摘眼球取血及分离血浆 | 第27-28页 |
| 2.2.2 ELISA检测小鼠血浆中细胞因子的含量 | 第28页 |
| 2.2.3 小鼠血浆离子浓度检测 | 第28页 |
| 2.2.4 ICP-OES检测细胞内外钾和氯的浓度 | 第28-30页 |
| 2.2.5 dotblot | 第30页 |
| 2.2.6 统计学处理 | 第30页 |
| 2.3 实验结果 | 第30-38页 |
| 2.3.1 小鼠受照后血浆中IL-18含量的检测 | 第30-31页 |
| 2.3.2 受照小鼠及放疗病人血浆中IL-1β含量的检测 | 第31-33页 |
| 2.3.3 受照小鼠及放疗病人血浆中REG蛋白的检测 | 第33-34页 |
| 2.3.4 受照小鼠血浆中IL-22、IL-23和IL-33浓度的检测 | 第34-36页 |
| 2.3.5 小鼠受照后血浆中K+的检测和体外验证 | 第36-38页 |
| 2.4 讨论 | 第38-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 文献综述 | 第45-55页 |
| 参考文献 | 第55-75页 |
| 攻读硕士学位期间公开发表的论文 | 第75-76页 |
| 中英文对照缩略词语表 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
