| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第1章 引言 | 第15-17页 |
| 第2章 材料与方法 | 第17-33页 |
| 2.1 主要试剂和材料 | 第17页 |
| 2.2 主要设备 | 第17-18页 |
| 2.3 部分试剂的配置 | 第18-19页 |
| 2.4 细胞学实验 | 第19-21页 |
| 2.4.1 细胞复苏 | 第19页 |
| 2.4.2 细胞换液 | 第19页 |
| 2.4.3 细胞传代 | 第19-20页 |
| 2.4.4 细胞冻存 | 第20-21页 |
| 2.4.5 细胞计数 | 第21页 |
| 2.5 MTT法检测细胞增殖抑制率 | 第21-23页 |
| 2.5.1 原理 | 第21页 |
| 2.5.2 药物浓度分组 | 第21-22页 |
| 2.5.3 实验步骤 | 第22-23页 |
| 2.6 Annexin V-PE/7-AAD法检测细胞凋亡率 | 第23-25页 |
| 2.6.1 原理 | 第23页 |
| 2.6.2 药物浓度分组 | 第23-24页 |
| 2.6.3 实验步骤 | 第24-25页 |
| 2.6.4 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第25页 |
| 2.7 RT-PCR检测药物作用后K562细胞株的凋亡基因P53 mRNA表达水平 | 第25-28页 |
| 2.7.1 细胞铺板 | 第25页 |
| 2.7.2 RNA提取 | 第25-26页 |
| 2.7.3 RNA浓度测定 | 第26页 |
| 2.7.4 逆转录反应 | 第26页 |
| 2.7.5 PCR反应扩增目的基因 | 第26-27页 |
| 2.7.6 琼脂糖电泳 | 第27页 |
| 2.7.7 引物序列 | 第27-28页 |
| 2.8 甲基纤维素集落形成实验 | 第28-29页 |
| 2.8.1 3%的甲基纤维素配置 | 第28页 |
| 2.8.2 药物分组 | 第28-29页 |
| 2.8.3 细胞处理 | 第29页 |
| 2.8.4 实验步骤 | 第29页 |
| 2.9 临床资料收集 | 第29-32页 |
| 2.9.1 病例与分组设计 | 第29-31页 |
| 2.9.2 治疗过程 | 第31-32页 |
| 2.9.3 缓解和评估标准 | 第32页 |
| 2.10 统计方法 | 第32-33页 |
| 第3章 结果 | 第33-46页 |
| 3.1 HHT、IDA以及HHT+IDA联合作用对K562细胞和HUVEC细胞增殖的影响 | 第33-36页 |
| 3.1.1 HHT对K562细胞和HUVEC细胞增殖的影响 | 第33页 |
| 3.1.2 IDA对K562细胞和HUVEC细胞增殖的影响 | 第33-34页 |
| 3.1.3 HHT联合IDA对K562细胞和HUVEC细胞增殖的影响 | 第34-36页 |
| 3.2 Annexin V-PE/7-AAD双染法检测HHT、IDA以及HHT+IDA联合作用对K562细胞和凋亡的影响 | 第36-41页 |
| 3.2.1 Annexin V-PE/7-AAD 双染法检测 HHT 作用 K562 细胞凋亡率 | 第36-38页 |
| 3.2.2 Annexin V-PE/7-AAD 双染法检测 IDA 作用 K562 细胞凋亡率 | 第38-39页 |
| 3.2.3 Annexin V-PE/7-AAD双染法检测HHT联合IDA作用K562细胞凋亡率 | 第39-41页 |
| 3.3 不同浓度HHT、IDA以及HHT+IDA联合作用对K562细胞基因P53mRNA表达的影响 | 第41页 |
| 3.4 不同浓度HHT、IDA以及HHT+IDA联合作用对K562细胞甲基纤维素集落形成的影响 | 第41-43页 |
| 3.5 临床病例 | 第43-46页 |
| 3.5.1 缓解率 | 第43-44页 |
| 3.5.2 不良反应 | 第44页 |
| 3.5.3 生存期 | 第44-46页 |
| 第4章 讨论 | 第46-49页 |
| 4.1 HHT联合IDA对白血病细胞增殖的影响 | 第46-47页 |
| 4.2 HHT联合IDA对白血病细胞凋亡和P53基因表达的影响 | 第47-48页 |
| 4.3 CHID方案的临床疗效 | 第48-49页 |
| 第5章 结论 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-53页 |
| 综述 | 第53-60页 |
| 参考文献 | 第58-60页 |
