| 中文摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-10页 |
| 第1章 绪论 | 第15-16页 |
| 第2章 应力刺激促进骨质疏松性骨折愈合研究进展的综述 | 第16-23页 |
| 2.1 应力刺激对骨质疏松和骨折愈合的影响 | 第17-19页 |
| 2.1.1 应力刺激对抗骨质疏松影响的研究 | 第17页 |
| 2.1.2 应力刺激对骨折愈合的影响 | 第17-19页 |
| 2.2 应力刺激对成骨细胞信号通路的影响 | 第19页 |
| 2.2.1 钙离子通路 | 第19页 |
| 2.3 应力刺激对成骨细胞细胞代谢和细胞因子的调控 | 第19-21页 |
| 2.3.1 转化生成因子β(transforminggrowthfactor-β,TGF-β) | 第20页 |
| 2.3.2 胰岛素样生长因子I(Insulin-likeGrowthFactor-I,IGF-I) | 第20-21页 |
| 2.3.3 碱性磷酸酶(ALP) | 第21页 |
| 2.4 展望 | 第21-23页 |
| 第3章 持续与间歇低载荷机械振动对MC3T3-E1细胞内经典Wnt信号通路、Runx2因子的调控 | 第23-37页 |
| 3.1 材料与方法 | 第23-26页 |
| 3.1.1 细胞 | 第23页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第23-24页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第24-25页 |
| 3.1.4 相关试剂配置 | 第25-26页 |
| 3.2 实验方法 | 第26-33页 |
| 3.2.1 MC3T3-E1细胞培养 | 第26页 |
| 3.2.2 MC3T3-E1细胞的冻存 | 第26页 |
| 3.2.3 实验分组及振动加载 | 第26-27页 |
| 3.2.4 RT-qPCR检测β-catenin、Runx2mRNA表达水平 | 第27-30页 |
| 3.2.5 Western-blot检测β-catenin蛋白水平变化 | 第30-33页 |
| 3.3 统计方法 | 第33页 |
| 3.4 结果 | 第33-35页 |
| 3.5 讨论 | 第35-37页 |
| 第4章 间歇低载荷机械振动作用下Wnt/β-catenin信号通路对MC3T3-E1细胞成骨效应的调控 | 第37-61页 |
| 4.1 材料与方法 | 第37-40页 |
| 4.1.1 细胞 | 第37页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第37-39页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第39页 |
| 4.1.4 相关试剂配置 | 第39-40页 |
| 4.2 实验方法 | 第40-48页 |
| 4.2.1 MC3T3-E1细胞培养 | 第40页 |
| 4.2.2 MC3T3-E1细胞的冻存 | 第40页 |
| 4.2.3 实验分组及振动加载 | 第40-41页 |
| 4.2.4 RT-qPCR检测cyclinD1mRNA,β-cateninmRNA,COLⅠmRNA,OCNmRNA,Runx2mRNA的表达水平 | 第41-44页 |
| 4.2.5 Western-blot法检测各组COLⅠ蛋白、OCN蛋白、β-catenin蛋白、Runx2蛋白表达水平 | 第44-47页 |
| 4.2.6 免疫荧光法检测细胞内β-catenin蛋白分布的影响 | 第47页 |
| 4.2.7 激光共聚焦显微镜观察间歇低载荷机械振动对MC3T3-E1细胞细胞骨架的影响 | 第47-48页 |
| 4.3 统计方法 | 第48页 |
| 4.4 结果 | 第48-54页 |
| 4.4.1 间歇低载荷机械振动、DKK1对MC3T3-E1细胞内Wnt/β-catenin信号通路相关基因的调控 | 第48-50页 |
| 4.4.2 间歇低载荷机械振动、DKK1对MC3T3-E1细胞成骨相关蛋白的调控 | 第50-52页 |
| 4.4.3 间歇低载荷机械振动、DKK1对MC3T3-E1细胞内β-catenin蛋白分布的影响 | 第52-54页 |
| 4.4.4 间歇低载荷机械振动对MC3T3-E1细胞细胞骨架的影响 | 第54页 |
| 4.5 讨论 | 第54-61页 |
| 第5章 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-70页 |
| 作者简介及在学校期间所取得的科研成果 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
