| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 缩略语表 | 第14-15页 |
| 1 引言 | 第15-30页 |
| 1.1 我国绒山羊简介及其育种现状 | 第15-16页 |
| 1.2 绒山羊皮肤毛囊结构 | 第16页 |
| 1.3 绒山羊毛囊发育及绒毛生长规律 | 第16-18页 |
| 1.4 毛囊发育、绒毛生长相关机理研究进展 | 第18-23页 |
| 1.4.1 绒毛生长相关激素及因子 | 第18-19页 |
| 1.4.2 毛囊发育、绒毛生长相关基因 | 第19-20页 |
| 1.4.3 毛囊发育、绒毛生长相关信号通路 | 第20-23页 |
| 1.5 光周期对毛囊生长调控的影响 | 第23-24页 |
| 1.6 基因芯片技术 | 第24-28页 |
| 1.6.1 基因芯片的概念 | 第25页 |
| 1.6.2 基因芯片的种类 | 第25页 |
| 1.6.3 基因芯片检测原理及基本流程 | 第25-26页 |
| 1.6.4 基因芯片技术的应用 | 第26-28页 |
| 1.7 绒山羊光控增绒技术 | 第28-29页 |
| 1.8 本研究的目的、意义及主要研究内容 | 第29-30页 |
| 2 研究一人工控制光照对绒山羊绒毛生长相关激素的影响 | 第30-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第30-31页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第30页 |
| 2.1.2 主要试剂和仪器 | 第30-31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-32页 |
| 2.2.1 绒山羊人工控制光照增绒处理 | 第31页 |
| 2.2.2 样品的采集与保存 | 第31页 |
| 2.2.3 激素及细胞因子含量测定 | 第31页 |
| 2.2.4 激素浓度的统计分析 | 第31-32页 |
| 2.3 结果与分析 | 第32-37页 |
| 2.3.1 控制光照前后绒毛生长指标和体重对比 | 第32页 |
| 2.3.2 绒山羊血液中的各激素浓度 | 第32-36页 |
| 2.3.3 激素相关性变化 | 第36-37页 |
| 2.4 讨论 | 第37-38页 |
| 2.5 小结 | 第38-39页 |
| 3 研究二人工控制光照激活绒山羊毛囊细胞增殖的研究 | 第39-47页 |
| 3.1 实验材料 | 第39页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第39页 |
| 3.1.2 主要试剂及仪器 | 第39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-40页 |
| 3.2.1 绒山羊人工控制光照增绒处理 | 第39页 |
| 3.2.2 皮肤组织样品的采集和处理 | 第39页 |
| 3.2.3 组织切片的制作及伊红-苏木素染色 | 第39-40页 |
| 3.2.4 碱性磷酸酶的检测 | 第40页 |
| 3.2.5 标志性蛋白表达检测 | 第40页 |
| 3.3 结果与分析 | 第40-45页 |
| 3.3.1 组织学分析 | 第40-42页 |
| 3.3.2 毛囊不同生长时期细胞增殖变化 | 第42-44页 |
| 3.3.3 毛囊干细胞的分化 | 第44页 |
| 3.3.4 毛囊中β-catenin的表达 | 第44-45页 |
| 3.4 讨论 | 第45-46页 |
| 3.5 小结 | 第46-47页 |
| 4 研究三控制光照和正常光照绒山羊皮肤差异表达基因筛选及分析 | 第47-72页 |
| 4.1 实验材料 | 第47-48页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第47页 |
| 4.1.2 主要试剂和仪器设备 | 第47-48页 |
| 4.1.3 芯片 | 第48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-50页 |
| 4.2.1 绒山羊人工控制光照增绒处理 | 第48页 |
| 4.2.2 皮肤样品的采集 | 第48页 |
| 4.2.3 RNA提取 | 第48-49页 |
| 4.2.4 检测RNA质量 | 第49页 |
| 4.2.5 芯片杂交基本流程 | 第49页 |
| 4.2.6 芯片清洗及扫描 | 第49页 |
| 4.2.7 获取图像及分析数据 | 第49页 |
| 4.2.8 差异表基因(DEGs)的生物信息学分析及功能预测 | 第49-50页 |
| 4.3 结果与分析 | 第50-67页 |
| 4.3.1 总RNA提取结果 | 第50-51页 |
| 4.3.2 芯片杂交信号图像 | 第51-52页 |
| 4.3.3 基因芯片杂交信号散点图 | 第52-53页 |
| 4.3.4 筛选差异性表达基因 | 第53-59页 |
| 4.3.5 差异表达基因的生物信息学分析及功能预测 | 第59-65页 |
| 4.3.6 差异表达基因分析结果 | 第65-67页 |
| 4.4 讨论 | 第67-70页 |
| 4.4.1 实验方法和结果分析 | 第67-68页 |
| 4.4.2 毛结构形成相关基因的差异性表达 | 第68-69页 |
| 4.4.3 毛囊周边皮肤附属物相关基因的差异性表达 | 第69-70页 |
| 4.5 小结 | 第70-72页 |
| 5 研究四K34、MLN和CYP1A1基因在绒山羊皮肤中的表达研究 | 第72-78页 |
| 5.1 实验材料 | 第72页 |
| 5.1.1 实验动物 | 第72页 |
| 5.1.2 主要试剂和仪器 | 第72页 |
| 5.2 实验方法 | 第72-75页 |
| 5.2.1 皮肤样品的采集 | 第72页 |
| 5.2.2 RNA的提取 | 第72-73页 |
| 5.2.3 RNA质量检测 | 第73页 |
| 5.2.4 反转录 | 第73页 |
| 5.2.5 荧光定量PCR引物设计 | 第73-74页 |
| 5.2.6 荧光定量PCR反应操作步骤 | 第74-75页 |
| 5.2.7 数据处理 | 第75页 |
| 5.3 结果与分析 | 第75-77页 |
| 5.3.1 总RNA提取结果 | 第75-76页 |
| 5.3.2 cDNA质量及引物特异性检测 | 第76页 |
| 5.3.3 K34、MLN和CYP1A1在绒山羊皮肤组织中的表达 | 第76-77页 |
| 5.4 讨论 | 第77-78页 |
| 5.5 小结 | 第78页 |
| 6 结论 | 第78-79页 |
| 7 创新点 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-92页 |
| 作者简介 | 第92页 |
