| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第1章 前言 | 第12-23页 |
| 1.1 海洋微生物来源的天然产物 | 第12-14页 |
| 1.2 海绵与海绵共附生微生物代谢产物 | 第14-15页 |
| 1.3 海洋生物污损与防治方法 | 第15-16页 |
| 1.3.1 海洋生物污损 | 第15页 |
| 1.3.2 海洋生物污损防治方法 | 第15-16页 |
| 1.4 抗污损天然产物 | 第16-18页 |
| 1.4.1 源于海洋藻类及水生植物的抗污损天然产物 | 第17页 |
| 1.4.2 源于陆生生物的抗污损天然产物 | 第17页 |
| 1.4.3 源于海洋无脊椎动物的抗污损天然产物 | 第17-18页 |
| 1.4.4 源于海洋微生物的抗污损天然产物 | 第18页 |
| 1.5 海洋微生物来源的抗污损天然产物研究方法 | 第18-21页 |
| 1.5.1 抗硅藻附着活性天然产物的筛选方法 | 第19-20页 |
| 1.5.2 海洋微生物活性天然产物的提取 | 第20页 |
| 1.5.3 海洋微生物活性天然产物的分离与纯化 | 第20页 |
| 1.5.4 海洋微生物活性天然产物的结构鉴定 | 第20-21页 |
| 1.6 研究设计思路与研究目的 | 第21-23页 |
| 第2章 受试菌株的活性验证和菌种鉴定 | 第23-31页 |
| 2.1 前言 | 第23页 |
| 2.2 材料 | 第23-25页 |
| 2.2.1 菌株来源 | 第23页 |
| 2.2.2 测试硅藻 | 第23页 |
| 2.2.3 培养基 | 第23-24页 |
| 2.2.4 主要仪器 | 第24页 |
| 2.2.5 主要试剂及常用溶液 | 第24-25页 |
| 2.3 方法 | 第25-27页 |
| 2.3.1 菌株的活化与保存 | 第25页 |
| 2.3.2 菌株培养及粗提物的获取 | 第25页 |
| 2.3.3 硅藻培养 | 第25页 |
| 2.3.4 抗硅藻附着活性测试 | 第25-26页 |
| 2.3.5 活性菌株的形态观察及扫描电镜分析 | 第26页 |
| 2.3.6 活性菌株的16S rDNA测序分析 | 第26-27页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第27-30页 |
| 2.4.1 受试菌株的活性验证 | 第27-28页 |
| 2.4.2 菌株UST050418-715的形态及扫描电镜分析 | 第28-29页 |
| 2.4.3 菌株UST050418-715的16S rDNA基因序列分析 | 第29-30页 |
| 2.5 本章小结 | 第30-31页 |
| 第3章 菌株UST050418-715的发酵条件优化 | 第31-39页 |
| 3.1 前言 | 第31页 |
| 3.2 实验材料 | 第31-32页 |
| 3.2.1 菌株 | 第31页 |
| 3.2.2 测试硅藻 | 第31-32页 |
| 3.2.3 实验培养基 | 第32页 |
| 3.2.4 主要仪器 | 第32页 |
| 3.2.5 主要试剂 | 第32页 |
| 3.3 实验方法 | 第32-34页 |
| 3.3.1 活性菌株发酵条件优化的正交试验设置 | 第32-33页 |
| 3.3.2 菌株的发酵和生长情况测定 | 第33-34页 |
| 3.3.3 粗提物产量和抗硅藻附着活性测定 | 第34页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第34-38页 |
| 3.4.1 培养基成分和发酵条件的正交试验结果分析 | 第34-36页 |
| 3.4.2 正交试验最优发酵条件确定 | 第36-38页 |
| 3.5 本章小结 | 第38-39页 |
| 第4章 菌株UST050418-715代谢产物中抗硅藻附着活性组分的分离、纯化与结构鉴定 | 第39-83页 |
| 4.1 前言 | 第39页 |
| 4.2 实验材料 | 第39-40页 |
| 4.2.1 试验菌株和硅藻 | 第39页 |
| 4.2.2 培养基 | 第39-40页 |
| 4.2.3 主要仪器 | 第40页 |
| 4.2.4 主要试剂 | 第40页 |
| 4.3 实验方法 | 第40-42页 |
| 4.3.1 菌株UST050418-715粗提物的制备 | 第40页 |
| 4.3.2 菌株UST050418-715粗提物的初步分离 | 第40-41页 |
| 4.3.3 活性物质的半制备HPLC分离 | 第41页 |
| 4.3.4 活性物质的鉴定 | 第41-42页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第42-81页 |
| 4.4.1 粗提物的制备 | 第42页 |
| 4.4.2 粗提物的初步分离 | 第42-46页 |
| 4.4.3 乙酸乙酯相Fr-3的半制备HPLC分离 | 第46-53页 |
| 4.4.4 二氯相Fr-2的半制备HPLC分离 | 第53-67页 |
| 4.4.5 化合物结构鉴定 | 第67-81页 |
| 4.5 本章小结 | 第81-83页 |
| 第5章 结论与展望 | 第83-86页 |
| 5.1 结论与讨论 | 第83-85页 |
| 5.1.1 试验菌株的筛选与鉴定 | 第83页 |
| 5.1.2 菌株UST050418-715发酵条件优化 | 第83-84页 |
| 5.1.3 菌株UST050418-715代谢产物的分离鉴定 | 第84-85页 |
| 5.2 展望 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-93页 |
| 附录 | 第93-100页 |
| 附录Ⅰ 菌株UST050418-715的16S rDNA鉴定 | 第93-95页 |
| 附录Ⅱ 化合物的~1H NMR波谱谱图 | 第95-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第101-102页 |
