| 摘要 | 第4-10页 |
| ABSTRACT | 第10-17页 |
| 目录 | 第18-21页 |
| 英文缩略词表 | 第21-23页 |
| 第一章 MiR-138表达与胆管癌细胞系生物学行为的实验研究 | 第23-42页 |
| 前言 | 第23页 |
| 第一节 材料和方法 | 第23-30页 |
| 1 材料 | 第23-25页 |
| 1.1 细胞系 | 第23页 |
| 1.2 主要仪器 | 第23-24页 |
| 1.3 主要试剂 | 第24-25页 |
| 2 方法 | 第25-30页 |
| 2.1 溶液配制 | 第25-26页 |
| 2.2 Real-Time PCR检测 | 第26-28页 |
| 2.3 miR-138对胆管癌细胞系的功能研究 | 第28-30页 |
| 3 统计学分析 | 第30页 |
| 第二节 结果 | 第30-37页 |
| 2.1 胆管癌细胞中RNA质量检测 | 第30-31页 |
| 2.2 miR-138在胆管癌细胞系中的表达 | 第31-32页 |
| 2.3 miR-138在胆管癌中的转染效率 | 第32页 |
| 2.4 Real-Time PCR检测转染后miR-138在胆管癌细胞中的变化 | 第32-34页 |
| 2.5 miR-138对胆管癌细胞QBC939增殖与凋亡的影响 | 第34-35页 |
| 2.6 miR-138对胆管癌细胞QBC939侵袭与迁移能力的影响 | 第35-37页 |
| 第三节 讨论 | 第37-41页 |
| 第四节 结论 | 第41-42页 |
| 第二章 MIR-138与RHOC靶基因关系的鉴定 | 第42-64页 |
| 前言 | 第42-43页 |
| 第一节 材料与方法 | 第43-57页 |
| 1 材料 | 第43-44页 |
| 1.1 细胞 | 第43页 |
| 1.2 主要仪器 | 第43-44页 |
| 1.3 主要试剂 | 第44页 |
| 2 方法 | 第44-57页 |
| 2.1 溶液配制 | 第44-45页 |
| 2.2 miR-138萤光素酶检测实验 | 第45-52页 |
| 2.3 Real-Time PCR检测转染后胆管癌细胞株QBC939中RhoC mRNA表达 | 第52-54页 |
| 2.4 Western blot检测转染后胆管癌细胞株QBC939中RhoC表达 | 第54-57页 |
| 3 统计学分析 | 第57页 |
| 第二节 结果 | 第57-61页 |
| 2.1 miR-138荧光素酶检测报告结果 | 第57-60页 |
| 2.2 miR-138对RhoC mRNA表达水平的影响 | 第60页 |
| 2.3 miR-138对RhoC蛋白表达水平的影响 | 第60-61页 |
| 第三节 讨论 | 第61-63页 |
| 第四节 结论 | 第63-64页 |
| 第三章 MIR-138和RHOC在胆管癌中的表达及临床意义 | 第64-74页 |
| 前言 | 第64页 |
| 第一节 材料和方法 | 第64-68页 |
| 1 材料 | 第64-65页 |
| 1.1 研究对象 | 第64-65页 |
| 1.2 主要仪器 | 第65页 |
| 1.3 主要试剂 | 第65页 |
| 2 方法 | 第65-68页 |
| 2.1 RNA原位杂交检测miR-138在胆管癌组织中的表达 | 第65-67页 |
| 2.2 免疫组化(SP)法检测RhoC在胆管癌组织中的表达 | 第67页 |
| 2.3 免疫组化结果判定标准 | 第67-68页 |
| 3 统计学分析 | 第68页 |
| 第二节 结果 | 第68-71页 |
| 2.1 MiR-138蛋白表达 | 第68-69页 |
| 2.2 RhoC的表达 | 第69-70页 |
| 2.3 MiR-138和RhoC在胆管癌中的相互关系 | 第70-71页 |
| 第三节 讨论 | 第71-73页 |
| 第四节 结论 | 第73-74页 |
| 全文结论 | 第74-75页 |
| 附图 | 第75-80页 |
| 参考文献 | 第80-88页 |
| 综述一 | 第88-104页 |
| 参考文献 | 第98-104页 |
| 综述二 | 第104-118页 |
| 参考文献 | 第112-118页 |
| 攻读学位期间主要研究成果 | 第118-119页 |
| 致谢 | 第119页 |
