| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 縮略语/符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-18页 |
| 研究现状、成果 | 第12-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-18页 |
| 1.1 实验动物与材料 | 第18-20页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.1.2 实验所用的主要仪器和设备 | 第18-19页 |
| 1.1.3 主要试剂及溶液配制 | 第19-20页 |
| 1.2 方法 | 第20-32页 |
| 1.2.1 树突状细胞的培养,鉴定C57BL/6小鼠骨髓树突状细胞 | 第20-21页 |
| 1.2.2 树突状细胞的鉴定 | 第21页 |
| 1.2.3 树突状细胞总RNA提取 | 第21-22页 |
| 1.2.4 树突状细胞总RNA逆转录 | 第22页 |
| 1.2.5 Quantitative real-time PCR(qPCR)实时定量PCR | 第22-24页 |
| 1.2.6 建立C57BL/6小鼠实验性自身免疫性葡萄膜炎动物模型 | 第24页 |
| 1.2.7 在免疫后的第6天,诱导培养树突状细胞 | 第24-25页 |
| 1.2.8 分离IRBP1-20特异性T细胞 | 第25页 |
| 1.2.9 IRBP1-20特异性T细胞与树突状细胞共培养 | 第25-26页 |
| 1.2.10 实时定量RT-qPCR检测共培养的T淋巴细胞基因变化 | 第26-27页 |
| 1.2.11 流式细胞术分析Th1与Th17细胞的比例 | 第27页 |
| 1.2.12 流式细胞仪分析p38抑制剂SB203580对Th17的影响 | 第27页 |
| 1.2.13 western blot检测P-P38 | 第27-32页 |
| 1.2.14 统计学处理 | 第32页 |
| 1.3 结果 | 第32-39页 |
| 1.3.1 小鼠骨髓来源树突状细胞的培养与鉴定 | 第32页 |
| 1.3.2 树突状细胞分泌细胞因子检测结果 | 第32-34页 |
| 1.3.3 实时定量RT-qPCR检测共培养的T淋巴细胞基因变化 | 第34-35页 |
| 1.3.4 流式细胞仪检测共培养的T淋巴细胞中Th1与Th17细胞的比例 | 第35-37页 |
| 1.3.5 抑制p38使Th17细胞下调 | 第37-38页 |
| 1.3.6 western blot检测经PGN刺激后树突状细胞中P-P38的表达情况 | 第38-39页 |
| 1.4 讨论 | 第39-43页 |
| 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第49-50页 |
| 综述 | 第50-66页 |
| 综述参考文献 | 第58-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
