| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第11-14页 |
| 1 前言 | 第14-16页 |
| 2 材料和方法 | 第16-24页 |
| 2.1 喉癌组织标本收集和细胞株 | 第16页 |
| 2.1.1 喉癌组织标本收集 | 第16页 |
| 2.1.2 细胞株 | 第16页 |
| 2.2 主要试剂和仪器 | 第16-17页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第16页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第16-17页 |
| 2.3 生物信息学网站地址和计算机统计软件 | 第17页 |
| 2.4 实验方法 | 第17-24页 |
| 2.4.1 细胞培养 | 第17页 |
| 2.4.2 细胞冻存 | 第17页 |
| 2.4.3 细胞复苏 | 第17-18页 |
| 2.4.4 质粒提取 | 第18页 |
| 2.4.5 细胞转染 | 第18-19页 |
| 2.4.6 细胞、组织总RNA的提取 | 第19页 |
| 2.4.7 cDNA合成和Real-timePCR反应 | 第19-20页 |
| 2.4.8 荧光素酶报告基因活性检测 | 第20-21页 |
| 2.4.9 Westernblot | 第21-22页 |
| 2.4.10 CCK-8法检测细胞增殖 | 第22页 |
| 2.4.11 克隆形成实验 | 第22-23页 |
| 2.4.12 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第23页 |
| 2.4.13 流式细胞术检测细胞周期 | 第23页 |
| 2.4.14 统计学数据分析 | 第23-24页 |
| 3 结果 | 第24-32页 |
| 3.1 miR-181a在喉癌组织和喉癌Hep2细胞中表达下调 | 第24-25页 |
| 3.2 NPM1在喉癌组织和喉癌Hep2细胞中表达上调 | 第25-26页 |
| 3.3 miR-181a靶基因NPM1的预测和鉴定 | 第26-27页 |
| 3.4 miR-181a抑制喉癌细胞增殖、促进喉癌细胞早期凋亡 | 第27-29页 |
| 3.5 NPM1促进喉癌细胞增殖、抑制喉癌细胞早期凋亡 | 第29-32页 |
| 4 讨论 | 第32-34页 |
| 5 结论 | 第34-35页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-40页 |
| 综述 | 第40-49页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 个人简历 | 第50页 |
