| 中文摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 符号说明 | 第9-11页 |
| 第—部分 文献综述 | 第11-22页 |
| 1 促血管生成素概述 | 第11-14页 |
| 1.1 Ang家族 | 第11页 |
| 1.2 Ang结构 | 第11-12页 |
| 1.3 Ang生理功能 | 第12-14页 |
| 2 Tie受体概述 | 第14-15页 |
| 2.1 Tie-1 | 第14页 |
| 2.2 Tie-2 | 第14-15页 |
| 2.3 Ang/Tie-2的下游信号 | 第15页 |
| 3 Ang/Tie的作用 | 第15-22页 |
| 3.1 Ang/Tie在血管新生中的作用 | 第15-17页 |
| 3.2 Ang/Tie抑制细胞凋亡维持细胞存活 | 第17-18页 |
| 3.3 Ang/Tie的在炎性反应中的作用 | 第18-19页 |
| 3.4 Ang/Tie与肿瘤的关系 | 第19-20页 |
| 3.5 Ang/Tie在其他生理或病理过程中的作用 | 第20-22页 |
| 第二部分 正文 | 第22-50页 |
| 第一章 Ang-2/T-2对洛克沙胂促内皮细胞增殖的影响 | 第23-32页 |
| 1 材料 | 第23-25页 |
| 1.1 主要药品及试剂 | 第23页 |
| 1.2 主要仪器 | 第23-24页 |
| 1.3 试剂配制 | 第24-25页 |
| 1.4 实验动物 | 第25页 |
| 2 方法 | 第25-27页 |
| 2.1 大鼠内皮细胞的分离及培养 | 第25-26页 |
| 2.2 洛克沙肿促内皮细胞生长中Ang-2/Tie2的作用 | 第26-27页 |
| 2.3 统计学分析 | 第27页 |
| 3 结果 | 第27-30页 |
| 3.1 细胞爬片免疫荧光 | 第27-28页 |
| 3.2 MTT法检测不同处理对内皮细胞活力的影响 | 第28-30页 |
| 4 讨论 | 第30-32页 |
| 第二章 洛克沙胂促内皮细胞生长中Ang-2和Tie-2蛋白的表达 | 第32-42页 |
| 1 材料 | 第32-33页 |
| 1.1 主要药品及试剂 | 第32页 |
| 1.2 主要仪器及其他 | 第32-33页 |
| 1.3 试剂溶液及配置 | 第33页 |
| 2 方法 | 第33-35页 |
| 2.1 内皮细胞的处理 | 第33-34页 |
| 2.2 Elisa法检测培养液中Ang-2的含量 | 第34页 |
| 2.3 Western Blot检测内皮细胞中Ang-2的水平 | 第34-35页 |
| 3 数据分析 | 第35-36页 |
| 4 结果 | 第36-40页 |
| 4.1 内皮细胞培养液中Ang-2的含量 | 第36-37页 |
| 4.2 Western Blot检测内皮细胞胞内Ang-2的含量 | 第37-40页 |
| 5 讨论 | 第40-42页 |
| 5.1 Elisa检测内皮细胞培养上清液中Ang-2的含量 | 第40页 |
| 5.2 Western Blot检测内皮细胞胞内Ang-2和Tie-2的含量 | 第40-42页 |
| 第三章 洛克沙胂促内皮细胞生长中Ang-2和Tie-2的mRNA表达 | 第42-50页 |
| 1 材料 | 第42页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第42页 |
| 1.2 仪器 | 第42页 |
| 2 方法 | 第42-44页 |
| 2.1 荧光定量PCR检测内皮细胞中Ang-2与Tie-2的mRNA | 第42-44页 |
| 2.2 荧光定量PCR基因表达的计算 | 第44页 |
| 3 结果 | 第44-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 全文讨论 | 第50-51页 |
| 全文结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
