| 摘要 | 第4-9页 |
| abstract | 第9-14页 |
| 中英文缩略词表 | 第18-19页 |
| 引言 | 第19-22页 |
| 1 材料与方法 | 第22-33页 |
| 1.1 实验对象 | 第22页 |
| 1.2 实验用药 | 第22页 |
| 1.3 实验材料 | 第22-23页 |
| 1.4 主要仪器与设备 | 第23-24页 |
| 1.5 常用试剂的配制方 | 第24-25页 |
| 1.5.1 细胞培养基配制方法(500ml) | 第24页 |
| 1.5.2 细胞冻存液配制方法 | 第24页 |
| 1.5.3 提纯DNA的体系的配制方法 | 第24-25页 |
| 1.5.4 逆转录体系的配制方法 | 第25页 |
| 1.5.5 PCR反应体系的配制方法 | 第25页 |
| 1.6 实验方法和步骤 | 第25-33页 |
| 1.6.1 多发性骨髓瘤U266B1和NCI-H929细胞的复苏与培养 | 第25-26页 |
| 1.6.2 细胞的传代 | 第26-27页 |
| 1.6.3 细胞的冻存 | 第27页 |
| 1.6.4 CCK-8法探求rmhTRAIL对多发性骨髓瘤细胞的增殖影响 | 第27-28页 |
| 1.6.5 流式细胞术测量rmhTRAIL对MM细胞凋亡的影响 | 第28-29页 |
| 1.6.6 CCK-8法探求BTZ单药及rmhTRAIL联合BTZ对多发性骨髓瘤细胞的增殖影响 | 第29页 |
| 1.6.7 AnnexinV-FITC/PI细胞凋亡检测 | 第29-30页 |
| 1.6.8 miR-17-5p和miR-886-5p的定量引物的设计 | 第30页 |
| 1.6.9 miR-17-5p和miR-886-5p的提取 | 第30-31页 |
| 1.6.10 逆转录成cDNA | 第31页 |
| 1.6.11 PCR法测量miR-17-5p和miR-886-5p含量 | 第31-32页 |
| 1.6.12 统计学处理 | 第32-33页 |
| 2 结果 | 第33-40页 |
| 2.1 rmhTRAIL对多发性骨髓瘤体外增殖抑制作用 | 第33-34页 |
| 2.3 流式细胞术测量rmhTRAIL引发的细胞凋亡 | 第34-35页 |
| 2.4 rmhTRAIL处理MM细胞对miR-17-5p和miR-886-5p的定量分析 | 第35-36页 |
| 2.5 单药及双药联合对MM细胞增殖抑制的影响 | 第36页 |
| 2.6 BTZ和rmhTRAIL具有协同作用 | 第36-37页 |
| 2.7 流式细胞术测量凋亡 | 第37-39页 |
| 2.8 双药对miR-17-5p和miR-886-5p的定量分析 | 第39-40页 |
| 3 讨论 | 第40-45页 |
| 3.1 rmhTRAIL可以有效抑制NCI-H929细胞的增殖 | 第40-42页 |
| 3.2 rmhTRAIL联合BTZ对MM细胞的杀伤具有协同作用 | 第42-43页 |
| 3.3 药物处理后miR-17-5p和miR-886-5p低表达的意义 | 第43-45页 |
| 4 结论 | 第45-46页 |
| 5 参考文献 | 第46-48页 |
| 综述 | 第48-62页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 个人简历及硕士期间发表的学术论文 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
