| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 1 前言 | 第12-18页 |
| 1.1 细胞自食概念 | 第12页 |
| 1.2 细胞自食的检测方法 | 第12-13页 |
| 1.3 细胞自食结构形成的机制 | 第13-14页 |
| 1.4 细胞自食与肿瘤发生发展进程的关系 | 第14-15页 |
| 1.5 食管癌的治疗现状 | 第15-16页 |
| 1.6 IL-24的生物学活性 | 第16-17页 |
| 1.7 本研究目的和意义 | 第17-18页 |
| 2 材料 | 第18-24页 |
| 2.1 细胞株 | 第18页 |
| 2.2 试剂盒 | 第18页 |
| 2.3 试剂 | 第18-19页 |
| 2.4 试剂配制 | 第19-23页 |
| 2.5 仪器设备 | 第23-24页 |
| 3 方法 | 第24-33页 |
| 3.1 食管癌组织标本收集 | 第24-25页 |
| 3.2 石蜡切片制备 | 第25页 |
| 3.2.1 组织包埋 | 第25页 |
| 3.2.2 切片 | 第25页 |
| 3.3 H&E染色 | 第25-26页 |
| 3.4 EML染色 | 第26页 |
| 3.5 重组人IL-24蛋白的亲和层析纯化 | 第26-29页 |
| 3.5.1 收集细胞上清 | 第26-27页 |
| 3.5.2 亲和胶用前处理 | 第27页 |
| 3.5.3 样品处理 | 第27页 |
| 3.5.4 装柱 | 第27页 |
| 3.5.5 洗杂蛋白 | 第27-28页 |
| 3.5.6 洗脱目的蛋白 | 第28页 |
| 3.5.7 亲和胶的用后处理 | 第28页 |
| 3.5.8 纯化蛋白的超滤浓缩 | 第28-29页 |
| 3.6 SDS-PAGE | 第29页 |
| 3.7 Western blot | 第29-30页 |
| 3.8 ELISA | 第30-31页 |
| 3.9 裸鼠荷瘤实验 | 第31页 |
| 3.10 MTT实验 | 第31-32页 |
| 3.11 细胞荧光染色 | 第32页 |
| 3.12 统计学分析 | 第32-33页 |
| 4 结果 | 第33-45页 |
| 4.1 食管癌组织标本中细胞自食与患者临床信息的相关性 | 第33-38页 |
| 4.1.1 食管癌配对组织标本中细胞自食数量不同 | 第33-34页 |
| 4.1.2 食管癌肿瘤组织中存在四种类型的细胞自食 | 第34-36页 |
| 4.1.3 食管癌肿瘤组织中细胞自食密度与患者临床信息的相关性 | 第36-38页 |
| 4.2 哺乳动物细胞表达的rhIL-24的纯化和鉴定 | 第38-39页 |
| 4.3 rhIL-24抑制食管鳞癌细胞增殖 | 第39-41页 |
| 4.3.1 表达rhIL-24工程细胞株对食管鳞癌细胞体内增殖的抑制 | 第39-40页 |
| 4.3.2 rhIL-24对食管癌细胞体外增殖的抑制 | 第40-41页 |
| 4.4 rhIL-24对不同食管鳞癌细胞自食的影响 | 第41-45页 |
| 4.4.1 表达rhIL-24工程细胞株对食管鳞癌细胞体内自食的影响 | 第41-43页 |
| 4.4.2 rhIL-24对食管鳞癌细胞体外细胞自食的影响 | 第43-45页 |
| 5 讨论 | 第45-48页 |
| 6 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 作者简历及攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第55-57页 |
| 学位论文数据集 | 第57页 |
