| 中文摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-15页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 第一部分 文献研究 | 第17-31页 |
| 1. 祖国医学对RSV肺炎的认识 | 第17-21页 |
| ·病名沿革 | 第17-18页 |
| ·病因病机 | 第18-19页 |
| ·辨证论治 | 第19-20页 |
| ·现代中医药抗RSV实验研究进展 | 第20-21页 |
| 2. 金欣口服液前期研究成果 | 第21-24页 |
| ·临床研究成果 | 第21-23页 |
| ·实验研究成果 | 第23-24页 |
| 3. 白藜芦醇抗炎抗病毒机理研究概况 | 第24-25页 |
| ·抗炎作用 | 第24-25页 |
| ·抗病毒作用 | 第25页 |
| 4. RSV与TLRs的关系 | 第25-31页 |
| ·TLRs家族成员 | 第26页 |
| ·部分TLR成员在RSV感染中的作用及信号转导通路 | 第26-31页 |
| 第二部分 实验研究 | 第31-79页 |
| 1. 材料 | 第31-35页 |
| ·病毒 | 第31页 |
| ·细胞 | 第31页 |
| ·动物 | 第31页 |
| ·药物 | 第31页 |
| ·试剂 | 第31-32页 |
| ·仪器及设备 | 第32-33页 |
| ·溶液的配制 | 第33-35页 |
| 2. 方法 | 第35-47页 |
| ·金欣口服液及其含药血清的制备以及白藜芦醇溶液的配制 | 第35-36页 |
| ·呼吸道合胞病毒的扩增及组织培养半数感染量(TCID_(50))的测定 | 第36-37页 |
| ·HEp-2细胞及RAW264.7细胞的培养 | 第37-38页 |
| ·RSV感染RAW264.7细胞模型的制备 | 第38页 |
| ·RSV感染BALB/c小鼠模型的制备 | 第38-39页 |
| ·实验分组、给药方案及标本的采集 | 第39-40页 |
| ·MTT法测定药物最大无毒浓度 | 第40-41页 |
| ·实时荧光定量PCR法检测金欣口服液及白藜芦醇干预后RSV感染RAW264.7细胞及BALB/c小鼠肺组织TLR3、TRIF、TRAF6 mRNA的转录水平 | 第41-43页 |
| ·细胞化学免疫荧光法及免疫印迹法测定金欣口服液及白藜芦醇干预后RSV感染RAW264.7细胞及BALB/c小鼠肺组织TLR3蛋白表达水平 | 第43-46页 |
| ·ELISA法检测金欣口服液及白藜芦醇干预后RSV感染RAW264.7细胞及BALB/c小鼠肺泡灌洗液中IL-1β、IL-6、TNF-α、IFN-β的表达水平 | 第46-47页 |
| ·肺组织病理评价金欣口服液及白藜芦醇干预后RSV感染BALB/c小鼠肺组织病变情况 | 第47页 |
| ·数据统计 | 第47页 |
| 3. 结果 | 第47-79页 |
| ·呼吸道合胞病毒组织培养半数感染量(TCID_(50))测定结果 | 第47-48页 |
| ·金欣口服液含药血清、白藜芦醇、利巴韦林对RAW264.7细胞最大无毒浓度测定结果#34 | 第48-50页 |
| ·金欣口服液及白藜芦醇对RSV感染RAW264.7细胞及BALB/c小鼠肺组织TLR3、TRIF、TRAF6 mRNA转录水平的调控作用 | 第50-59页 |
| ·金欣口服液及白藜芦醇对RSV感染RAW264.7细胞及BALB/c小鼠肺组织TLR3蛋白表达水平的影响 | 第59-64页 |
| ·金欣口服液及白藜芦醇对RSV感染RAW264.7细胞及BALB/c小鼠肺泡灌洗液中IL-1β、IL-6、TNF-α、IFN-β表达水平的调控作用 | 第64-72页 |
| ·金欣口服液及白藜芦醇对RSV感染BALB/c小鼠肺组织病变的干预作用 | 第72-76页 |
| 各组病理图片 | 第76-79页 |
| 第三部分 讨论 | 第79-86页 |
| 第四部分 结语 | 第86-89页 |
| 1. 结论 | 第86页 |
| 2. 本研究创新之处 | 第86-87页 |
| 3. 问题与展望 | 第87-89页 |
| 参考文献 | 第89-95页 |
| 英文缩略词表 | 第95-97页 |
| 在读期间发表论文 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 个人简历 | 第99页 |
